Analyses de laboratoire : savoir les lire
Un rapport d’analyse peut sembler rassurant au premier regard. Pourtant, sa présence ne suffit pas : encore faut-il vérifier quel produit a été analysé, par quelle méthode, à quelle date et pour quels paramètres.
Pour comprendre un certificat, il faut apprendre à distinguer le résultat mesuré, son interprétation et la conclusion de conformité éventuellement ajoutée par le laboratoire ou l’entreprise.
Les éléments que nous allons apprendre à vérifier
- L’identité du laboratoire et le numéro du rapport.
- Le produit, la matrice et le lot réellement analysés.
- Les dates de réception, d’analyse et de validation.
- Les méthodes utilisées et leur éventuelle accréditation.
- Les unités, les conversions et les formes cannabinoïdiques.
- Les mentions LOD, LOQ, ND, NQ et l’incertitude de mesure.
- Les contaminants recherchés et ceux qui ne l’ont pas été.
- La signification réelle des mentions « conforme » ou « Pass ».
Un certificat utile doit permettre d’identifier le laboratoire, l’échantillon, le lot, la méthode, les résultats, les unités et les limites du contrôle . S’il manque l’un de ces éléments, la portée du document devient plus difficile à évaluer.
Qu’est-ce qu’un rapport d’analyse de laboratoire ?
C’est un document présentant les résultats obtenus sur un échantillon identifié, dans des conditions analytiques déterminées.
Le laboratoire reçoit une matière ou un produit, prépare l’échantillon, applique une ou plusieurs méthodes, puis rapporte les résultats correspondant aux paramètres qui lui ont été demandés.
Le rapport ne décrit donc pas automatiquement toute la gamme d’une marque, toutes les unités d’un lot ou toutes les substances potentiellement présentes.
Un échantillon précis
Les résultats concernent d’abord la portion effectivement reçue et préparée par le laboratoire.
La confiance accordée à l’ensemble du lot dépend aussi de la manière dont cette portion a été prélevée.
Des paramètres sélectionnés
Le laboratoire recherche uniquement les cannabinoïdes, contaminants ou caractéristiques inclus dans la demande et dans la méthode appliquée.
Une ligne absente du rapport ne signifie donc pas forcément que le paramètre a été analysé puis jugé conforme.
Une méthode déterminée
Chaque résultat dépend d’une technique, d’une préparation, d’une plage de mesure et de performances analytiques précises.
Deux méthodes différentes peuvent produire des résultats difficilement comparables si elles ne mesurent pas exactement la même chose.
Une situation datée
Le rapport décrit l’échantillon dans l’état où il se trouvait au moment de l’analyse.
Le stockage, la lumière, l’oxygène, la température ou une reformulation ultérieure peuvent modifier le produit.
Un résultat analytique doit toujours être replacé dans son contexte
La substance
CBD, CBDA, THC, pesticide, métal, solvant ou autre paramètre précisément défini.
La matrice
Matière végétale, huile, extrait, cosmétique ou autre type d’échantillon.
La méthode
Technique, préparation, étalonnage et conditions utilisées pour produire le résultat.
La valeur
Concentration ou quantité exprimée avec une unité et des limites analytiques.
Résultat, interprétation et conformité ne signifient pas la même chose
Une grande partie des erreurs de lecture vient de la confusion entre ces trois niveaux.
Le résultat
C’est la valeur obtenue par la méthode : par exemple une concentration exprimée en pourcentage, en milligrammes par gramme ou en microgrammes par kilogramme.
Le résultat doit rester associé à son unité, à sa méthode et à l’échantillon analysé.
L’interprétation
Elle explique ce que la valeur peut signifier dans un contexte donné : correspondance avec une étiquette, comparaison à une spécification ou évolution entre deux analyses.
Une même valeur peut être interprétée différemment selon la catégorie du produit et l’objectif du contrôle.
La conclusion de conformité
Elle compare le résultat à une limite, à une spécification ou à une règle de décision identifiée.
La mention « conforme » n’est compréhensible que si le lecteur sait à quel critère le résultat a été comparé.
Une valeur chiffrée ne répond pas à toutes les questions
Imaginons qu’un rapport indique une concentration de CBD de 98 milligrammes par millilitre.
Cette ligne fournit un résultat analytique. Elle ne permet pas, à elle seule, de savoir si le produit contient la quantité totale annoncée, car il faut aussi connaître son volume réel.
Elle ne démontre pas non plus que les pesticides, les métaux, les microorganismes ou les solvants résiduels ont été recherchés.
Enfin, elle ne permet pas de conclure à la conformité sans connaître le critère ou la tolérance auxquels la valeur doit être comparée.
Une mention « conforme » doit toujours faire demander : conforme à quoi ?
Il peut s’agir d’une limite réglementaire, d’une spécification fixée par le fabricant, d’une exigence du client ou d’une plage définie dans un cahier des charges.
Ces référentiels ne sont pas nécessairement équivalents. Une conformité à une spécification interne ne doit donc pas être présentée automatiquement comme une conformité réglementaire générale.
Le rapport doit idéalement indiquer le critère utilisé ou laisser clairement la décision de conformité au client.
Ce qu’un certificat peut démontrer, et ce qu’il ne démontre pas
Les résultats obtenus sur l’échantillon analysé
Il peut indiquer la concentration de certaines substances, la présence ou l’absence de détection de paramètres ciblés et les conditions générales du contrôle.
Il peut également permettre de comparer ces valeurs aux caractéristiques annoncées pour le produit.
Toute la qualité et toute la sécurité du produit
Il ne démontre pas l’absence de toutes les substances qui n’ont pas été recherchées.
Il ne garantit pas non plus que chaque unité commercialisée possède exactement la même composition que l’échantillon reçu.
Un document peut contenir plusieurs lignes consacrées au CBD, au CBDA, au THC, au THCA ou au CBG sans comporter le moindre contrôle de contaminants.
La présence d’un profil cannabinoïde ne permet donc pas d’affirmer que les pesticides, les métaux, les microorganismes, les mycotoxines ou les solvants ont été contrôlés.
Pour connaître le périmètre réel du rapport, il faut parcourir toutes ses pages et identifier chaque famille d’essais.
Quel rôle joue l’accréditation du laboratoire ?
Elle permet de reconnaître la compétence du laboratoire pour des activités analytiques définies, selon un référentiel et une portée déterminés.
Une compétence évaluée
Le laboratoire doit démontrer sa capacité à mettre en œuvre ses activités avec du personnel, des équipements, des méthodes et un système de gestion adaptés.
Une portée limitée
L’accréditation ne couvre pas automatiquement toutes les analyses proposées par le laboratoire.
Il faut vérifier si la matrice, le paramètre et la méthode concernés figurent dans la portée applicable.
Le laboratoire est accrédité, donc toutes les lignes du rapport le sont
Un même laboratoire peut réaliser des essais inclus dans sa portée d’accréditation et d’autres essais qui ne le sont pas.
Le statut doit être examiné pour l’analyse précise concernée, et pas seulement pour l’entreprise dans son ensemble.
Vérifier la portée correspondant à l’essai
La portée décrit les domaines, matrices, paramètres et techniques pour lesquels la compétence est reconnue.
Cette vérification sera détaillée dans la quatrième partie de ce guide.
Un certificat accessible n’est pas toujours un certificat exploitable
Document peu exploitable
Le lot est absent, le produit est mal identifié, seules certaines pages sont visibles ou les unités ne sont pas compréhensibles.
Le document existe, mais il ne permet pas de vérifier correctement le produit commercialisé.
Document réellement utile
Le laboratoire, le rapport, l’échantillon, le lot, les dates, les méthodes et les résultats sont clairement reliés.
Les pages sont complètes et les limites du contrôle peuvent être comprises.
Un certificat fournisseur ne décrit pas toujours la formulation commercialisée
Le document peut concerner un extrait concentré avant sa dilution, une matière végétale avant sa transformation ou un ingrédient avant son mélange avec d’autres composants.
Si le produit final a été formulé, aromatisé, dilué ou conditionné après cette analyse, sa composition peut être différente.
Le rapport reste utile pour la traçabilité de la matière, mais il doit être présenté comme tel.
Les dix erreurs à éviter dès la première lecture
- Considérer la présence d’un rapport comme une garantie absolue.
- Lire uniquement la ligne CBD sans vérifier les autres paramètres.
- Supposer que tous les contaminants possibles ont été recherchés.
- Ne pas vérifier le numéro de lot inscrit sur le produit.
- Confondre une analyse de matière première avec celle du produit fini.
- Comparer des valeurs sans regarder leurs unités.
- Traduire automatiquement « non détecté » par « absence totale ».
- Interpréter la mention « conforme » sans identifier le seuil utilisé.
- Supposer que toutes les analyses du laboratoire sont accréditées.
- Utiliser un ancien certificat pour plusieurs lots successifs sans vérifier leur correspondance.
Les cinq éléments à repérer avant de lire les résultats
Le laboratoire
Son nom, ses coordonnées et son éventuelle accréditation sont-ils identifiables ?
Le rapport
Possède-t-il un numéro, une date, une version et une validation clairement visibles ?
L’échantillon
Le nom, la référence, la matrice et le lot correspondent-ils au produit présenté ?
Les essais
Quelles familles de substances ont réellement été recherchées ?
Les conclusions
Les résultats chiffrés sont-ils visibles derrière les mentions « Pass », « conforme » ou « ND » ?
Les informations essentielles peuvent être réparties entre la première page, les tableaux de résultats, les notes de bas de page et les annexes.
Une capture d’écran montrant uniquement le taux de CBD ou une ligne verte de conformité ne permet pas d’évaluer correctement le rapport.
Il faut consulter la version complète du document avant de tirer une conclusion sur le lot.
Un rapport d’analyse ne doit pas seulement être présent : il doit permettre de comprendre ce qui a été mesuré, sur quel échantillon et avec quelles limites.
Nous considérons qu’un certificat ne doit jamais servir de simple décoration commerciale ou de symbole général de confiance.
Sa valeur dépend de la possibilité de relier le rapport au bon produit, au bon lot, aux bonnes méthodes et aux paramètres réellement contrôlés.
Une présentation transparente doit aussi reconnaître clairement les essais qui n’ont pas été réalisés.
Nous examinerons l’en-tête du document : identité du laboratoire, numéro du rapport, dates, version, validation, signature et signes permettant de repérer un certificat incomplet ou modifié.
Comment identifier le laboratoire et vérifier l’intégrité du rapport ?
Avant de lire le taux de CBD ou la conclusion de conformité, il faut s’assurer que le document provient d’un laboratoire identifiable et qu’il constitue bien un rapport complet.
Le nom du laboratoire, la référence unique du rapport, les dates, la version et la validation permettent de distinguer un document exploitable d’une simple capture d’écran ou d’un extrait impossible à authentifier.
Un rapport sérieux doit pouvoir être relié à un laboratoire, une référence unique, une date d’émission et une personne autorisée à valider les résultats .
Les informations à retrouver avant d’examiner les résultats
L’identité du laboratoire
Nom, adresse ou coordonnées permettant d’identifier l’établissement ayant réalisé ou émis le rapport.
La référence du rapport
Un numéro ou un identifiant unique permettant de retrouver le document dans le système du laboratoire.
Le client ou demandeur
L’entreprise ou la personne ayant demandé l’analyse peut être indiquée séparément du fabricant du produit.
Les dates importantes
Prélèvement éventuel, réception, début ou période d’analyse, validation et émission du rapport.
La version du document
Rapport initial, nouvelle émission, correction, amendement ou remplacement d’une version antérieure.
La validation
Nom, fonction, signature électronique ou autre mécanisme permettant d’identifier l’autorisation de diffusion.
Quelles informations doivent identifier le laboratoire ?
Le lecteur doit pouvoir savoir quelle structure assume la production et la diffusion des résultats.
Une raison sociale identifiable
Le nom du laboratoire doit apparaître clairement, sans se limiter à un logo difficile à retrouver.
Il peut être différent du nom commercial utilisé sur son site internet.
Le site ayant réalisé l’activité
Lorsqu’une organisation possède plusieurs établissements, le rapport doit permettre d’identifier le site concerné.
Cette précision est importante car les activités reconnues peuvent différer d’un site à l’autre.
Des coordonnées vérifiables
Adresse, site officiel, adresse électronique ou moyen de contact facilitent la vérification du document.
Les références d’accréditation
Lorsqu’une activité est présentée comme accréditée, le rapport peut comporter une référence permettant d’en consulter la portée.
Le logo seul ne suffit pas à déterminer quels essais sont réellement couverts.
Le laboratoire qui émet le rapport n’a pas forcément réalisé toutes les analyses
Certains essais peuvent être confiés à un laboratoire partenaire ou à un sous-traitant spécialisé.
Le document doit permettre de comprendre quelles activités ont été réalisées par l’émetteur et lesquelles proviennent éventuellement d’une autre organisation.
Il faut alors vérifier la compétence et le statut applicables au laboratoire qui a réellement produit le résultat.
Pourquoi le numéro du rapport est-il indispensable ?
Une référence unique permet au laboratoire de retrouver la demande, l’échantillon, les données analytiques et la version du rapport qui a été transmise.
Identifier un seul dossier
La référence évite de confondre deux échantillons proches, deux analyses successives ou deux lots portant un nom similaire.
Demander une vérification
En cas de doute, le numéro permet de contacter le laboratoire sans transmettre uniquement une photographie ou un nom de produit imprécis.
Il identifie le document et le dossier du laboratoire
Il est attribué par le laboratoire pour assurer la traçabilité de son activité.
Il ne correspond pas nécessairement à la référence inscrite sur le produit.
Il identifie la fabrication ou le groupe de produits
Il est attribué par le fabricant, le conditionneur ou l’entreprise responsable.
Les deux références doivent apparaître ou pouvoir être reliées pour vérifier la correspondance entre le rapport et le produit.
Comment savoir si toutes les pages sont présentes ?
Un rapport peut comporter plusieurs tableaux, notes, commentaires et annexes indispensables à son interprétation.
Pagination continue
Une indication comme « page 2 sur 5 » permet de repérer immédiatement une page manquante.
Référence répétée
Le numéro du rapport peut être rappelé sur chaque page afin d’éviter qu’une feuille soit rattachée au mauvais dossier.
Fin du document identifiable
Une mention de fin, une signature, une validation ou une dernière page clairement repérée aide à vérifier que le document n’a pas été interrompu.
Une image montrant uniquement le nom du produit, le taux de CBD et une mention « Pass » peut dissimuler les méthodes, les notes de bas de page, les limites de quantification ou les essais non accrédités.
Certaines réserves importantes peuvent apparaître uniquement à la fin du rapport ou sous le tableau de résultats.
Il faut donc privilégier le fichier complet transmis par l’entreprise ou accessible depuis une source identifiable.
Les différentes dates ne doivent pas être confondues
Date de prélèvement
Elle indique quand l’échantillon a été prélevé, lorsqu’une information de prélèvement est disponible.
Elle ne doit pas être confondue avec la date d’envoi ou de réception au laboratoire.
Date de réception
Elle correspond à l’arrivée de l’échantillon dans le laboratoire.
L’état du colis et les conditions de réception peuvent influencer l’acceptation de l’échantillon.
Date ou période d’analyse
Elle indique quand les opérations analytiques ont été réalisées.
Plusieurs familles d’essais peuvent avoir été effectuées à des dates différentes.
Date de validation
Elle correspond à la revue et à l’autorisation des résultats avant leur diffusion.
Date d’émission
Elle indique la date à laquelle la version du rapport a été officiellement émise.
Date de modification
Elle peut apparaître lorsqu’un rapport a été corrigé, complété ou réémis.
Les dates doivent former une succession cohérente
Dans une chronologie habituelle, l’échantillon est prélevé, envoyé ou remis au laboratoire, reçu, analysé, puis le rapport est validé et émis.
Les dates ne sont pas obligatoirement identiques : plusieurs jours peuvent séparer la réception, la réalisation des essais et l’émission du document.
Une incohérence apparente ne démontre pas automatiquement une falsification, mais elle doit pouvoir être expliquée.
Une version corrigée peut également porter une date plus récente que celle des essais initiaux.
Le rapport est ancien, donc il n’est plus valable
Un rapport ancien peut encore décrire correctement un lot ancien qui reste identifiable et correctement conservé.
La date seule ne permet pas de conclure à l’inutilité du document.
Le lot analysé est-il toujours celui qui est commercialisé ?
Le véritable problème apparaît lorsqu’un rapport ancien est utilisé pour couvrir des lots produits ultérieurement.
Il faut donc comparer le lot du rapport à celui qui figure sur le produit actuel.
Comment reconnaître un rapport corrigé ou remplacé ?
Une correction peut être légitime, mais elle doit rester traçable et ne pas créer deux versions concurrentes présentées comme définitives.
Rapport initial
Il s’agit de la première version autorisée et communiquée au client.
Rapport révisé
Une nouvelle version peut corriger une erreur d’identification, une unité, une information administrative ou une autre donnée justifiée.
Rapport remplacé
La nouvelle émission doit permettre d’identifier le document qu’elle annule ou remplace.
Nature de la modification
Le lecteur doit pouvoir comprendre ce qui a été modifié et distinguer une correction administrative d’un changement de résultat.
Une entreprise peut expliquer les résultats dans un document séparé, traduire certains termes ou produire une synthèse pédagogique.
Elle ne doit cependant pas modifier directement le rapport original, supprimer des lignes défavorables ou ajouter une conclusion laissant croire qu’elle provient du laboratoire.
La version originale et la synthèse commerciale doivent rester clairement distinctes.
Une signature manuscrite est-elle obligatoire ?
Pas nécessairement. Un rapport peut être autorisé au moyen d’une signature électronique, d’un nom, d’une fonction, d’un système informatique sécurisé ou d’un autre mécanisme contrôlé par le laboratoire.
Une personne autorisée
Le rapport doit permettre d’identifier la responsabilité de son autorisation ou de sa validation.
Un système préservant l’intégrité
Le mode de diffusion doit limiter les modifications non autorisées et permettre de retrouver la version officielle.
Une signature scannée n’est pas automatiquement plus fiable qu’une validation électronique
Une image de signature peut être copiée d’un document à un autre sans que le lecteur puisse le détecter.
À l’inverse, un document sans signature manuscrite peut avoir été généré et autorisé par un système informatique contrôlé.
L’important est de pouvoir identifier l’émetteur, la version officielle et le mécanisme d’autorisation.
Un QR code garantit-il l’authenticité du certificat ?
Il peut faciliter la vérification, mais sa simple présence ne prouve rien si sa destination n’est pas fiable.
Il renvoie vers une image hébergée par le vendeur
Le fichier peut avoir été remplacé ou modifié sans contrôle du laboratoire.
Le QR code facilite seulement l’accès au document choisi par l’entreprise.
Il renvoie vers le système officiel du laboratoire
La référence, le lot et la version peuvent être comparés à une source contrôlée par l’émetteur.
Il faut néanmoins vérifier le nom de domaine et les informations affichées.
- Le nom du laboratoire est absent ou impossible à vérifier.
- Le document ne comporte aucun numéro de rapport.
- Seule une page isolée ou une capture du tableau est disponible.
- La pagination indique que plusieurs pages manquent.
- Le numéro du rapport change d’une page à l’autre.
- Les dates apparaissent dans un ordre incohérent sans explication.
- Le document porte des traces visibles de montage ou de suppression.
- Une ancienne version et une version corrigée circulent simultanément.
- Le nom ou la fonction de la personne ayant autorisé le rapport ne peut pas être identifié.
- Le QR code renvoie vers un fichier différent du rapport affiché.
- Le logo d’accréditation est utilisé sans référence vérifiable.
- Une synthèse commerciale est présentée comme si elle avait été rédigée par le laboratoire.
Les dix éléments à contrôler dans l’en-tête
- Le nom complet du laboratoire.
- Le site ou l’adresse de l’établissement concerné.
- Le numéro unique du rapport.
- Le nom du client ou du demandeur lorsqu’il est indiqué.
- La date de réception de l’échantillon.
- La date ou la période d’analyse.
- La date d’émission du document.
- Le numéro de version ou la mention d’une révision.
- La pagination complète du rapport.
- L’identification de la personne ou du système ayant autorisé sa diffusion.
Avant de faire confiance aux chiffres, il faut vérifier l’identité, la date, la version et l’intégrité du document qui les présente.
Nous considérons qu’un rapport doit pouvoir être consulté dans sa version complète, et non sous la forme d’une simple capture sélectionnant les résultats les plus favorables.
Le laboratoire, le numéro du rapport, les dates et la version doivent rester visibles afin que le document puisse être vérifié et replacé dans son contexte.
Une synthèse pédagogique peut accompagner le certificat, mais elle ne doit jamais remplacer ou modifier le rapport original.
Nous vérifierons l’échantillon lui-même : nom du produit, numéro de lot, matrice analysée, produit fini ou matière première, méthode de prélèvement et représentativité du résultat.
Comment vérifier l’échantillon et le numéro de lot analysés ?
Des résultats précis ne sont utiles que si l’on sait exactement à quel produit, à quelle matière et à quel lot ils se rapportent.
Le nom commercial ne suffit pas. Il faut aussi vérifier la référence, la matrice, le numéro de lot, l’état de l’échantillon et la personne ayant réalisé le prélèvement.
Le résultat concerne d’abord l’échantillon réellement reçu et analysé. Son extension à tout un lot dépend de la qualité du prélèvement, de l’homogénéité du produit et de la traçabilité disponible.
Les informations à retrouver sur le rapport
Le nom de l’échantillon
Il doit être suffisamment précis pour distinguer le produit des autres références de la gamme.
La référence interne
Une référence commerciale, fournisseur ou laboratoire peut compléter le nom du produit.
Le numéro de lot
Il relie le rapport à une fabrication, une récolte, un conditionnement ou un ensemble défini d’unités.
La matrice
Matière végétale, extrait, huile, poudre, cosmétique ou autre forme réellement soumise à l’analyse.
La quantité reçue
La masse, le volume ou le nombre de contenants reçus peut être précisé dans le dossier du laboratoire.
L’état à la réception
Emballage, température, intégrité, fuite, humidité apparente ou autre observation pouvant influencer l’analyse.
Pourquoi le nom commercial ne suffit-il pas toujours ?
Une même appellation peut être utilisée pour plusieurs lots, plusieurs concentrations ou plusieurs formulations.
Identification trop générale
Une désignation comme « huile CBD », « extrait chanvre » ou « produit premium » ne permet pas de distinguer précisément la référence analysée.
La concentration, le volume et la formulation peuvent varier derrière un nom similaire.
Identification suffisamment précise
Nom du produit, concentration annoncée, format, référence, numéro de lot et matrice peuvent être combinés.
Le lecteur peut alors comparer ces informations avec celles inscrites sur l’emballage.
Les informations à comparer avec l’emballage
- Le nom exact ou la désignation du produit.
- La concentration annoncée en CBD.
- Le volume, la masse ou le nombre d’unités.
- Le numéro de lot inscrit sur le contenant.
- La référence commerciale lorsqu’elle existe.
- La nature de la formulation ou de la matière.
- L’entreprise ou le client associé à l’analyse.
- La chronologie entre la fabrication et l’analyse.
Quel rôle joue le numéro de lot ?
Le numéro de lot permet de regrouper des produits associés à une même fabrication, à une même matière, à une même période ou à un même conditionnement selon le système de l’entreprise.
Relier le produit au rapport
Le lot figurant sur le certificat doit correspondre à celui inscrit sur l’unité commercialisée.
Une différence de caractère, de suffixe ou de date mérite une explication.
Retrouver l’historique
Le lot peut permettre de retrouver les matières utilisées, les opérations réalisées, les contrôles et les réclamations.
Isoler une anomalie
Si un problème est détecté, le lot aide à identifier les unités susceptibles d’être concernées.
Comparer plusieurs fabrications
Deux lots portant le même nom commercial peuvent présenter des différences de composition ou de matière première.
Sans numéro de lot ou autre identifiant suffisamment précis, il devient difficile de démontrer que le certificat concerne réellement le produit présenté au consommateur.
Le rapport peut provenir d’une fabrication antérieure, d’un autre fournisseur ou d’une matière utilisée pour plusieurs formulations différentes.
Une autre référence peut parfois assurer la correspondance, mais elle doit être expliquée et documentée.
Le vendeur présente le certificat d’un autre lot
Le nom du produit et la concentration sont identiques, mais le numéro du rapport ne correspond pas au lot vendu.
Le document montre qu’un produit similaire a été analysé, pas nécessairement la fabrication actuelle.
Une correspondance documentée relie les deux références
L’entreprise explique clairement la relation entre lot fournisseur, lot de fabrication et lot de conditionnement.
Cette chaîne permet de comprendre pourquoi plusieurs identifiants apparaissent sans désigner des produits différents.
Pourquoi peut-on trouver plusieurs numéros de lot ?
Une formulation finale peut associer plusieurs matières, plusieurs fournisseurs et une nouvelle opération de conditionnement.
Lot de matière première
Il identifie par exemple une matière végétale, un extrait, une huile support ou un autre ingrédient reçu.
Lot de fabrication
Il identifie l’opération pendant laquelle les ingrédients ont été mélangés ou transformés.
Lot de conditionnement
Il peut identifier la mise en flacon, en pot ou en emballage réalisée à une date déterminée.
L’essentiel est de pouvoir reconstituer la relation entre eux
Une entreprise peut attribuer son propre lot au produit fini tout en conservant les lots des matières premières dans son dossier de fabrication.
Le certificat fournisseur peut porter sur le lot de l’extrait, tandis que l’emballage présente le lot de la formulation terminée.
Cette situation est exploitable uniquement si la traçabilité interne permet de relier les deux références sans ambiguïté.
Qu’est-ce que la matrice analysée ?
La matrice désigne le milieu ou le matériau dans lequel les substances recherchées doivent être mesurées.
Elle influence la préparation de l’échantillon, la méthode, les interférences possibles et les performances analytiques.
Matière végétale
Matrice solide et potentiellement hétérogène contenant des tissus, des particules et une humidité variable.
Formulation huileuse
Matrice liquide contenant un support lipidique, des cannabinoïdes et éventuellement d’autres ingrédients.
Extrait concentré
Matrice riche en composés extraits, parfois visqueuse, cristallisée ou fortement purifiée.
Formulation cosmétique
Mélange pouvant contenir une phase aqueuse, une phase huileuse, des émulsifiants et de nombreux autres ingrédients.
Une méthode adaptée à une matrice ne l’est pas automatiquement à toutes les autres
Les autres constituants de l’échantillon peuvent perturber l’extraction, la séparation ou la détection de la substance recherchée.
Une méthode mise au point sur une huile pure peut nécessiter une vérification supplémentaire avant d’être appliquée à une crème, à une résine ou à une matière végétale.
La portée de la méthode doit donc être compatible avec le type d’échantillon effectivement analysé.
Une désignation vague comme « hemp product » ou « CBD sample » apporte moins d’informations qu’une matrice clairement décrite.
Le laboratoire a-t-il analysé la matière première ou le produit fini ?
Les deux analyses peuvent être utiles, mais elles ne répondent pas aux mêmes questions.
Elle renseigne sur un ingrédient avant formulation
L’analyse peut porter sur un extrait concentré, un isolat, une matière végétale ou une huile support.
Elle aide à qualifier le fournisseur et à calculer les quantités nécessaires à la fabrication.
Il renseigne sur la formulation réellement conditionnée
L’analyse intervient après la dilution, le mélange, l’ajout d’ingrédients et les principales étapes de fabrication.
Elle permet de comparer plus directement le résultat à l’étiquette du produit commercialisé.
Une analyse d’extrait ne confirme pas le dosage après dilution
Un extrait peut être analysé à une concentration élevée, puis être dilué dans une huile support pour fabriquer plusieurs lots de produits finis.
Le certificat de l’extrait aide à calculer la formulation, mais il ne démontre pas que chaque flacon contient exactement la quantité annoncée.
Cette vérification nécessite un contrôle du mélange final ou un système de fabrication suffisamment démontré et maîtrisé.
Qui a prélevé l’échantillon envoyé au laboratoire ?
Cette information influence la portée du résultat et le niveau de confiance accordé à sa représentativité.
Prélèvement par le client
L’entreprise choisit et envoie elle-même la portion qui sera analysée.
Le laboratoire ne maîtrise alors pas nécessairement la sélection initiale dans le lot.
Prélèvement par le laboratoire
Le laboratoire ou son représentant intervient selon un plan et des instructions définis.
Son rôle peut alors couvrir le prélèvement ainsi que l’analyse.
Prélèvement par un tiers
Un organisme distinct peut prélever, sceller et transmettre l’échantillon au laboratoire.
Ses procédures et son indépendance doivent être identifiables.
Lorsque le client envoie lui-même un contenant, le laboratoire peut analyser correctement l’échantillon reçu sans pouvoir confirmer qu’il représente toute la production.
Le rapport peut donc préciser que les résultats concernent l’échantillon tel qu’il a été reçu.
La qualité analytique du résultat et la représentativité du prélèvement sont deux dimensions distinctes.
Qu’est-ce qu’un échantillon représentatif ?
C’est un échantillon prélevé de manière à refléter suffisamment les caractéristiques de l’ensemble que l’on souhaite évaluer.
Sa représentativité dépend du type de produit, de son homogénéité, du nombre d’unités, de la localisation des prélèvements et du plan utilisé.
Définir la cible
Il faut savoir si l’on souhaite représenter un contenant, une cuve, une récolte, un carton ou tout un lot commercial.
Choisir le nombre de prélèvements
Un seul point peut être insuffisant lorsque le lot présente des variations internes importantes.
Varier les positions
Haut, milieu, fond, début, fin ou différentes unités peuvent être considérés selon la structure du lot.
Utiliser une procédure définie
Le prélèvement doit limiter les choix subjectifs, les contaminations et les pertes de constituants.
La variation du lot peut être plus importante que la variation de l’instrument
Un laboratoire peut mesurer avec une excellente répétabilité la petite portion qu’il a préparée.
Le résultat peut malgré tout être peu représentatif si la portion initiale a été choisie dans une zone particulièrement riche ou pauvre en substance.
L’incertitude globale ne provient donc pas uniquement de la mesure instrumentale : le prélèvement et la préparation physique peuvent aussi jouer un rôle majeur.
Plus la matière est hétérogène, plus la stratégie d’échantillonnage devient importante.
Tous les produits ne présentent pas la même homogénéité
Matières solides hétérogènes
La taille des particules, l’humidité, la répartition des différentes parties et les manipulations peuvent créer des variations importantes.
Liquides correctement mélangés
Une formulation liquide peut être plus homogène, sous réserve de la solubilité, du mélange et de l’absence de séparation des phases.
Extraits visqueux
Leur manipulation et leur homogénéisation peuvent être difficiles, notamment en présence de cristaux ou de gradients de composition.
Produits conditionnés en unités
Plusieurs contenants peuvent être comparés pour évaluer la variation entre les unités d’un même lot.
Homogénéiser l’échantillon reçu ne corrige pas un mauvais prélèvement
Le broyage, le mélange ou une autre préparation physique peuvent améliorer la représentativité de la prise d’essai à l’intérieur du contenant reçu.
Ils ne peuvent pas rendre cette portion représentative d’un lot complet si sa sélection initiale ne l’était pas.
Il faut donc distinguer l’échantillonnage du lot, la préparation de l’échantillon de laboratoire et la prise d’essai introduite dans la méthode.
Trois niveaux à ne pas confondre
L’échantillon prélevé
C’est la quantité sélectionnée dans le lot et destinée au contrôle.
L’échantillon de laboratoire
C’est la matière effectivement reçue, enregistrée et éventuellement préparée par le laboratoire.
La prise d’essai
C’est la petite portion pesée ou mesurée pour réaliser une détermination analytique.
Qu’est-ce qu’un échantillon composite ?
Il est obtenu en réunissant plusieurs prélèvements réalisés à différents endroits ou sur différentes unités.
Rechercher une valeur moyenne
Le mélange peut produire une estimation plus globale de la composition moyenne du lot.
Risque de masquer une unité atypique
Une portion très élevée ou très faible peut être diluée dans l’ensemble du composite.
Le résultat ne décrit alors pas la variation entre les unités.
Utile pour approcher la moyenne du lot
Plusieurs prélèvements sont mélangés avant l’analyse.
Le résultat final ne permet plus de connaître séparément la valeur de chaque portion.
Utiles pour étudier les variations internes
Chaque unité ou prélèvement est analysé séparément.
Cette stratégie demande davantage d’analyses, mais elle révèle mieux l’hétérogénéité.
À quoi servent les scellés et la chaîne de possession ?
Dans certains contextes, une traçabilité renforcée documente les personnes ayant manipulé l’échantillon, les dates de transfert et l’intégrité de son emballage.
Identifier le contenant
Une étiquette ou un numéro unique accompagne l’échantillon pendant son transport.
Vérifier l’intégrité
Un scellé peut aider à repérer une ouverture ou une manipulation non prévue.
Documenter les transferts
Les prises en charge successives peuvent être enregistrées jusqu’à la réception au laboratoire.
Les conditions de transport peuvent-elles modifier le résultat ?
Oui, lorsque les substances ou la matrice sont sensibles à la chaleur, à la lumière, à l’air, à l’humidité ou au temps.
Température
Une température excessive peut favoriser des transformations, des pertes de composés volatils ou une évolution microbiologique.
Lumière
Une exposition prolongée peut modifier certains composés sensibles à la lumière.
Air et fermeture
Une fermeture insuffisante peut entraîner une oxydation, une perte de matière ou une contamination.
Humidité
Une matière végétale peut absorber ou perdre de l’eau, ce qui modifie sa masse et certaines concentrations exprimées.
Durée de transport
Un délai prolongé peut devenir important pour les paramètres instables ou microbiologiques.
Contenant
Son matériau et son étanchéité doivent être compatibles avec la matrice et les substances recherchées.
Le laboratoire peut constater une fuite, un emballage cassé, une quantité insuffisante, une température inadaptée ou une identification ambiguë.
Selon la nature du problème et les accords avec le client, il peut refuser l’analyse ou signaler une réserve dans le rapport.
Cette remarque doit être lue avant d’interpréter les résultats.
Une partie de l’échantillon est-elle toujours conservée ?
Cela dépend des accords, de la politique du laboratoire, de la quantité disponible, de la stabilité du produit et des exigences applicables.
Échantillon retenu
Une portion peut être conservée pendant une durée définie pour permettre certaines vérifications ultérieures.
Limites de la réanalyse
La quantité restante, son stockage et son évolution peuvent limiter la possibilité de reproduire exactement l’analyse initiale.
Les douze questions à poser
- Le nom du produit est-il suffisamment précis ?
- Une référence complémentaire est-elle indiquée ?
- Le numéro de lot correspond-il exactement à l’emballage ?
- Les différents lots fournisseur et fabricant peuvent-ils être reliés ?
- La matrice analysée est-elle clairement décrite ?
- S’agit-il d’une matière première ou du produit fini ?
- La quantité ou le nombre de contenants reçus est-il identifiable ?
- Qui a réalisé le prélèvement ?
- Un plan d’échantillonnage a-t-il été utilisé ?
- L’échantillon peut-il représenter l’ensemble du lot ?
- Son état et ses conditions de transport étaient-ils acceptables ?
- Une réserve concernant la réception ou la représentativité apparaît-elle dans le rapport ?
- Le rapport indique seulement « CBD sample » sans autre précision.
- Aucun numéro de lot n’apparaît.
- Le lot du certificat diffère de celui inscrit sur le produit.
- Une analyse de matière première est présentée comme celle du produit fini.
- La matrice indiquée ne correspond pas à la forme commercialisée.
- Le certificat d’un ancien lot est utilisé pour toutes les fabrications suivantes.
- L’entreprise ne peut pas relier le lot fournisseur au lot final.
- Aucune information ne permet de savoir qui a prélevé l’échantillon.
- Une seule unité choisie par le vendeur est présentée comme représentative de toute la production.
- Le rapport signale un emballage détérioré ou une quantité insuffisante.
- Les conditions de transport semblent incompatibles avec la stabilité du paramètre recherché.
- Une capture commerciale masque les remarques relatives à la réception ou au prélèvement.
Un résultat peut être parfaitement mesuré tout en représentant imparfaitement le lot si l’échantillon a été mal choisi.
Nous considérons que le numéro de lot et la matrice analysée sont aussi importants que les chiffres inscrits dans le tableau.
Une analyse de matière première peut apporter une information utile, mais elle ne doit pas être présentée comme la vérification directe d’une formulation terminée lorsqu’elle a ensuite été diluée, mélangée ou transformée.
La transparence exige également de préciser qui a sélectionné l’échantillon et dans quelle mesure il peut représenter le lot commercialisé.
Nous examinerons les méthodes analytiques, la validation, l’accréditation ISO/IEC 17025 et la portée exacte des essais couverts par le laboratoire.
Comment vérifier la méthode et l’accréditation d’une analyse CBD ?
Un résultat n’est pas seulement un chiffre : il dépend de la méthode, de la matrice, de la préparation de l’échantillon et des performances démontrées par le laboratoire.
La mention ISO/IEC 17025 constitue un repère important, mais elle ne signifie pas que toutes les analyses proposées par le laboratoire sont automatiquement couvertes par son accréditation.
Pour juger une analyse, vérifiez la substance recherchée, la matrice, la méthode utilisée, ses performances et son éventuelle présence dans la portée d’accréditation du laboratoire .
Qu’est-ce qu’une méthode analytique ?
Une méthode décrit l’ensemble des opérations permettant de produire un résultat à partir d’un échantillon.
Elle ne se limite pas au nom de l’instrument. Elle comprend aussi la préparation de la matière, les réactifs, l’étalonnage, les conditions de séparation, le traitement des données et les règles de calcul.
Préparation de l’échantillon
Broyage, homogénéisation, pesée, dilution, extraction et filtration peuvent influencer directement le résultat.
Séparation des composés
Une technique adaptée permet de distinguer les molécules recherchées des autres constituants de la matrice.
Détection
Le détecteur transforme la réponse de l’instrument en un signal pouvant être identifié et mesuré.
Étalonnage
Des références connues servent à établir la relation entre la réponse de l’appareil et la quantité recherchée.
Calcul du résultat
Les dilutions, la masse initiale et les unités doivent être intégrées correctement dans la valeur finale.
Contrôles de qualité
Blancs, références, répétitions et autres contrôles permettent de surveiller le bon déroulement de la série analytique.
Écrire « HPLC » ou « chromatographie » ne décrit pas toute la méthode
Le nom de la technique indique principalement la famille d’instrumentation utilisée.
Deux laboratoires utilisant une chromatographie liquide peuvent employer des préparations, des colonnes, des détecteurs, des étalonnages et des calculs différents.
Ces différences peuvent modifier les substances distinguées, la sensibilité, la plage de mesure et la comparabilité des résultats.
Quelles techniques peut-on rencontrer dans un rapport CBD ?
Le choix dépend de la substance recherchée, de la matrice et du niveau de sensibilité nécessaire.
Chromatographie liquide
Elle peut séparer différents cannabinoïdes avant leur détection et permettre de distinguer certaines formes acides et neutres.
Le type de détecteur et les molécules couvertes doivent néanmoins être précisés par la méthode.
Chromatographie en phase gazeuse
Elle est fréquemment employée pour des composés volatils, notamment certains solvants ou profils de substances aromatiques.
La température utilisée pendant l’analyse peut être importante pour certaines molécules sensibles à la chaleur.
Spectrométrie de masse
Elle peut être associée à une séparation chromatographique pour améliorer l’identification ou la sensibilité.
Son utilisation ne rend pas automatiquement la méthode adaptée à toutes les matrices ou à toutes les substances.
Techniques pour les éléments métalliques
Des techniques instrumentales spécifiques peuvent être utilisées pour mesurer des éléments comme le plomb, le cadmium, le mercure ou l’arsenic.
La préparation et la minéralisation de la matrice font partie intégrante du résultat.
Méthodes microbiologiques
Elles peuvent reposer sur une culture, un dénombrement, une détection ciblée ou d’autres principes adaptés au microorganisme recherché.
Les conditions d’incubation et le mode d’expression du résultat doivent être pris en compte.
Autres méthodes ciblées
Des méthodes spécifiques peuvent être nécessaires pour les mycotoxines, les pesticides, l’humidité, la stabilité ou d’autres caractéristiques.
La technique doit toujours être reliée au paramètre réellement recherché.
L’instrument est très sophistiqué, donc le résultat est forcément juste
Un instrument performant ne corrige pas une mauvaise identification, un prélèvement non représentatif ou une préparation inadaptée.
Une erreur de dilution ou un étalon mal maîtrisé peut également affecter le résultat final.
La chaîne complète doit être maîtrisée
Prélèvement, réception, préparation, séparation, détection, étalonnage, calcul et contrôle qualité participent tous au résultat.
La qualité ne peut donc pas être déduite du seul nom de l’appareil.
Méthode normalisée, publiée ou interne : quelles différences ?
Méthode normalisée
Elle provient d’un organisme de normalisation ou d’un référentiel reconnu et décrit une procédure définie.
Le laboratoire doit néanmoins vérifier qu’il sait correctement l’appliquer dans ses propres conditions.
Méthode publiée
Elle peut provenir d’une publication scientifique, d’une organisation professionnelle ou d’un fabricant d’instrumentation.
Son adaptation à la matrice et à l’objectif du laboratoire doit être évaluée.
Méthode interne
Elle est développée ou assemblée par le laboratoire pour répondre à un besoin particulier.
Elle n’est pas automatiquement moins fiable, mais ses performances doivent être démontrées pour son usage prévu.
Le laboratoire doit utiliser la méthode dans son domaine d’application
Une procédure conçue pour une matrice précise ne doit pas être étendue automatiquement à une formulation très différente.
Une modification importante de la préparation, du détecteur ou des conditions peut également nécessiter une validation ou une vérification complémentaire.
La simple citation d’une norme ne prouve donc pas que toutes ses conditions ont été respectées.
Que signifie « méthode validée » ?
Cela signifie que le laboratoire a étudié des caractéristiques permettant de démontrer que la méthode convient à l’objectif pour lequel elle sera utilisée.
La validation ne rend pas une méthode universelle. Elle reste liée à des substances, des matrices, une plage de concentrations et des conditions définies.
Sélectivité
Capacité à distinguer la substance recherchée des autres constituants ou interférences de la matrice.
Domaine de mesure
Intervalle de concentrations dans lequel la méthode produit une réponse suffisamment maîtrisée.
Justesse
Proximité entre la valeur moyenne obtenue et une valeur de référence appropriée.
Fidélité
Proximité entre des résultats répétés dans des conditions définies.
Limite de détection
Niveau auquel la présence d’une substance peut être distinguée du bruit ou d’une absence de signal.
Limite de quantification
Niveau à partir duquel une valeur chiffrée peut être rapportée avec des performances définies.
Robustesse
Capacité de la méthode à rester suffisamment stable face à de petites variations maîtrisées de ses conditions.
Incertitude
Évaluation de la dispersion raisonnablement attribuable au résultat mesuré.
Stabilité
Vérification de l’évolution possible des solutions, étalons ou échantillons pendant la procédure.
Une méthode validée doit encore être maîtrisée au quotidien
La validation initiale démontre les performances de la méthode dans des conditions définies.
Le laboratoire doit ensuite surveiller ses séries analytiques, ses équipements, ses étalons, ses réactifs et la compétence des personnes qui réalisent les essais.
Une modification importante de l’instrument, de la préparation, de la matrice ou de la plage de mesure peut nécessiter une nouvelle étude.
La validation n’est donc pas une étiquette définitive détachée de l’utilisation réelle de la méthode.
Quelle différence entre validation et vérification ?
Démontrer les performances nécessaires
Elle est particulièrement importante pour une méthode interne, modifiée ou utilisée hors du domaine initialement prévu.
L’étendue des études dépend de l’objectif et des risques associés au résultat.
Confirmer la bonne mise en œuvre dans le laboratoire
Une méthode reconnue peut nécessiter une démonstration montrant que le laboratoire atteint les performances attendues avec son personnel et ses équipements.
La vérification ne consiste pas seulement à copier le protocole d’une autre organisation.
Changer la matrice, la quantité prélevée, le solvant d’extraction, le détecteur ou la plage de concentration peut modifier les performances de la méthode.
Plus l’adaptation est importante, plus il devient nécessaire de démontrer que les résultats restent appropriés à l’objectif.
La référence d’une méthode connue ne doit pas masquer les modifications réellement appliquées.
Que garantit réellement l’accréditation ISO/IEC 17025 ?
Elle reconnaît la compétence du laboratoire pour des activités clairement définies et évalue également son fonctionnement, son impartialité et sa capacité à produire des résultats valides.
Elle ne constitue pas une certification générale de tous les produits analysés ni une approbation commerciale des marques clientes.
Compétence du personnel
Les personnes doivent être autorisées et compétentes pour les activités dont elles ont la charge.
Équipements maîtrisés
Les équipements doivent être adaptés, surveillés et entretenus selon les besoins de l’activité.
Méthodes appropriées
Le laboratoire doit sélectionner, vérifier ou valider les méthodes employées selon leur usage.
Traçabilité des mesures
Les références et étalonnages utilisés doivent permettre une chaîne de traçabilité adaptée au résultat.
Validité des résultats
Des dispositions doivent permettre de surveiller la performance et de repérer les dérives.
Impartialité
Les risques susceptibles d’influencer l’objectivité du laboratoire doivent être identifiés et maîtrisés.
Le produit est « certifié ISO 17025 »
La norme concerne le laboratoire et ses activités, pas la certification commerciale du produit analysé.
Un résultat produit sous accréditation ne transforme pas le produit en produit « certifié ISO ».
L’essai a été réalisé sous accréditation
Cette formulation peut être employée lorsque l’analyse concernée entre effectivement dans la portée du laboratoire et que le rapport l’identifie comme telle.
Il faut toujours conserver le lien avec l’essai précis.
Qu’est-ce que la portée d’accréditation ?
La portée décrit les activités pour lesquelles la compétence du laboratoire est officiellement reconnue.
Sa présentation varie selon le domaine, mais elle permet généralement d’identifier plusieurs dimensions techniques.
Le site concerné
L’accréditation peut être rattachée à un établissement ou à une implantation déterminée.
Le domaine d’activité
Analyses chimiques, microbiologiques ou autre domaine clairement identifié.
La matrice
Types de produits ou matériaux sur lesquels la compétence a été reconnue.
Le paramètre
Substance, famille de substances ou caractéristique effectivement recherchée.
Le principe technique
Technique ou famille de méthodes utilisée pour produire le résultat.
La référence de méthode
Norme, procédure interne ou autre document définissant l’activité couverte.
L’accréditation doit correspondre à la ligne que vous lisez
Un laboratoire peut être accrédité pour la recherche de certains contaminants dans une catégorie de produits déterminée.
Cette reconnaissance ne couvre pas automatiquement le dosage des cannabinoïdes dans une autre matrice.
Inversement, un profil cannabinoïde peut entrer dans la portée alors qu’un autre essai affiché dans le même rapport est réalisé hors accréditation.
La vérification doit donc être effectuée essai par essai lorsque les statuts diffèrent.
Un rapport peut réunir des résultats réalisés sous accréditation et d’autres résultats qui ne le sont pas.
Le laboratoire doit utiliser une présentation permettant de distinguer le statut applicable aux différentes activités.
Il faut lire les symboles, astérisques, notes et légendes associés aux tableaux.
Un essai non accrédité est-il forcément mauvais ?
Non. Cela signifie d’abord que cet essai précis n’est pas couvert par la reconnaissance officielle présentée dans la portée.
Hors accréditation signifie résultat faux
Un laboratoire peut mettre en œuvre une méthode techniquement sérieuse avant son intégration dans sa portée.
Le résultat ne bénéficie simplement pas de la même reconnaissance externe pour cette activité précise.
Demander quelles garanties techniques existent
Validation, contrôles qualité, comparaisons interlaboratoires et expérience sur la matrice peuvent apporter des informations.
Le statut doit toutefois être présenté honnêtement et sans utiliser abusivement la marque d’accréditation.
Certaines portées permettent des adaptations encadrées
Selon la forme de portée reconnue, un laboratoire peut disposer d’une capacité encadrée pour faire évoluer certains éléments de ses méthodes ou de ses activités.
Cette souplesse ne signifie pas qu’il peut ajouter librement n’importe quelle matrice ou n’importe quel paramètre.
Les limites de cette flexibilité restent définies dans les documents d’accréditation et les listes internes maîtrisées.
Comment lire une analyse sous-traitée ?
Un laboratoire peut confier une activité à une autre organisation compétente, notamment lorsqu’il ne possède pas la méthode ou la capacité nécessaires.
Identifier le producteur du résultat
Le rapport doit permettre de comprendre quelle organisation a réellement effectué l’essai.
Vérifier son statut
L’éventuelle accréditation doit être vérifiée auprès du laboratoire ayant produit le résultat.
Conserver la traçabilité
La relation entre l’échantillon initial, le transfert et le résultat final doit rester identifiable.
Distinguer les responsabilités
L’émetteur du rapport et le laboratoire sous-traitant peuvent avoir des responsabilités documentaires différentes.
Comment le laboratoire vérifie-t-il qu’une analyse fonctionne ?
Plusieurs contrôles peuvent être intégrés à la série afin de détecter une contamination, une dérive ou un défaut de préparation.
Blanc analytique
Il aide à repérer un signal provenant des réactifs, du matériel ou de la procédure plutôt que de l’échantillon.
Matériau ou échantillon de contrôle
Une valeur connue ou attendue permet de surveiller la justesse et la stabilité de la méthode.
Répétition ou duplicata
Plusieurs déterminations peuvent aider à évaluer la variation de la préparation et de la mesure.
Ajout connu
Une quantité connue ajoutée à la matrice peut aider à étudier la récupération de la substance pendant la procédure.
Étalonnage contrôlé
Les points et critères de la courbe doivent rester compatibles avec les règles définies par la méthode.
Comparaisons externes
La comparaison avec d’autres laboratoires peut fournir une information complémentaire sur la performance.
Le rapport destiné au client présente généralement les résultats de son échantillon et les informations nécessaires à leur interprétation.
Les détails des blancs, étalonnages et contrôles de série peuvent être conservés dans les enregistrements techniques du laboratoire.
Leur absence visuelle du certificat ne signifie donc pas qu’aucun contrôle n’a été réalisé.
Les essais d’aptitude permettent de comparer des performances
Plusieurs laboratoires peuvent recevoir des échantillons comparables et transmettre leurs résultats à un organisateur.
Cette comparaison aide à repérer un écart important par rapport aux résultats attendus ou au groupe de participants.
Une participation satisfaisante apporte un élément de surveillance, mais ne remplace pas la validation quotidienne de chaque série.
La pertinence dépend également de la similitude entre l’exercice, la matrice et la concentration réellement analysées au laboratoire.
Les douze questions à poser
- La méthode ou sa référence est-elle indiquée ?
- Le paramètre recherché est-il clairement défini ?
- La matrice entre-t-elle dans le domaine de la méthode ?
- La technique de séparation ou de détection est-elle identifiable ?
- La méthode est-elle normalisée, publiée, adaptée ou interne ?
- Les adaptations importantes sont-elles signalées ?
- Les performances ont-elles été validées pour l’usage prévu ?
- La plage de mesure correspond-elle aux concentrations attendues ?
- Les limites analytiques sont-elles suffisamment basses ?
- L’essai entre-t-il réellement dans la portée d’accréditation ?
- Le rapport distingue-t-il les essais accrédités des autres ?
- Une éventuelle sous-traitance est-elle identifiable ?
Comment vérifier une portée d’accréditation ?
Identifier l’organisme d’accréditation
Repérez son nom, sa marque et le numéro associé au laboratoire.
Rechercher le laboratoire
Utilisez la base officielle plutôt qu’une copie de certificat hébergée uniquement par le vendeur.
Vérifier le site
Comparez l’adresse ou l’établissement avec celui indiqué sur le rapport.
Ouvrir l’annexe technique
Recherchez la matrice, le paramètre, la technique et la méthode concernés.
Vérifier la validité
Contrôlez que l’accréditation et la portée étaient applicables à la date pertinente.
Comparer avec le rapport
Vérifiez les astérisques, notes et statuts indiqués à côté de chaque résultat.
- Aucune référence de méthode n’apparaît.
- Le rapport indique uniquement le nom d’un instrument.
- Une méthode conçue pour une autre matrice est utilisée sans justification visible.
- La marque affirme que le produit est « certifié ISO 17025 ».
- Le logo d’accréditation est présenté comme une certification du produit.
- Toutes les lignes sont annoncées comme accréditées sans distinction de statut.
- Le laboratoire n’apparaît pas dans la base officielle de l’organisme d’accréditation indiqué.
- Le site du rapport ne correspond pas au site couvert.
- La matrice ou le paramètre ne figure pas dans la portée consultée.
- Une méthode interne est qualifiée de « norme officielle » sans référence identifiable.
- Une adaptation importante n’est pas mentionnée.
- Un résultat sous-traité est présenté comme s’il avait été produit directement par le laboratoire émetteur.
L’accréditation ne se vérifie pas seulement sur le logo du laboratoire : elle se vérifie dans la portée correspondant à l’essai précis que l’on souhaite interpréter.
Nous considérons que la référence de méthode et le statut d’accréditation doivent rester visibles et compréhensibles sur les rapports présentés au public.
Une marque ne devrait pas transformer l’accréditation d’un laboratoire en certification générale de ses produits.
La bonne pratique consiste à préciser quelles analyses ont été réalisées sous accréditation, lesquelles ne le sont pas, et quelles limites restent associées aux méthodes utilisées.
Nous apprendrons à lire les unités et à effectuer les conversions : pourcentage, milligrammes par gramme, milligrammes par millilitre, microgrammes, ppm, ppb, quantité totale et bases de calcul.
Comment lire les unités d’une analyse de laboratoire CBD ?
Un chiffre n’a de sens que s’il reste associé à son unité, à la quantité de produit concernée et à la base de calcul utilisée.
Pourcentage, milligrammes par gramme, milligrammes par millilitre, microgrammes par kilogramme, ppm ou ppb ne sont pas des présentations interchangeables sans conversion.
En concentration massique, 1 % correspond à 10 mg/g. Pour obtenir une quantité totale, il faut ensuite multiplier la concentration par la masse ou le volume réellement contenu.
Ne jamais séparer la valeur de son unité
Une proportion
Le pourcentage exprime une quantité relative par rapport à une base définie.
Il ne donne pas directement la quantité totale contenue dans l’emballage.
Un nombre incomplet
La valeur « 100 » peut signifier 100 mg/g, 100 mg/ml, 100 µg/kg ou une autre unité.
Ces résultats ne décrivent pas la même concentration.
Une base de calcul
Le résultat peut être exprimé par rapport à la masse brute, à la matière sèche, au volume ou à une unité conditionnée.
Cette base doit être identifiée avant toute comparaison.
Posez trois questions au résultat
Combien ? Quelle est la valeur numérique rapportée ?
Par rapport à quoi ? Un gramme, un millilitre, un kilogramme, le produit total ou la matière sèche ?
Dans quelle quantité commerciale ? Quel est le poids ou le volume réel du produit conditionné ?
Que signifie un résultat exprimé en pourcentage ?
Le symbole % signifie littéralement « pour cent », mais la nature exacte du rapport doit être comprise.
Pour une concentration massique, 10 % signifie généralement 10 grammes de substance pour 100 grammes de produit, soit 100 milligrammes par gramme.
Un gramme pour cent grammes
Sur une base masse par masse, 1 % équivaut à 1 g pour 100 g.
Cela correspond également à 10 mg/g.
Dix grammes pour cent grammes
Sur une base masse par masse, 10 % équivaut à 10 g pour 100 g.
Cela correspond à 100 mg/g.
Cinq cents milligrammes par gramme
Sur une base masse par masse, 50 % correspond à 500 mg/g.
La moitié de la masse est alors attribuée à la substance considérée.
| Pourcentage | Équivalent en mg/g | Équivalent en g/100 g | Lecture simplifiée |
|---|---|---|---|
| 0,1 % | 1 mg/g | 0,1 g/100 g | Un milligramme par gramme |
| 1 % | 10 mg/g | 1 g/100 g | Dix milligrammes par gramme |
| 5 % | 50 mg/g | 5 g/100 g | Cinquante milligrammes par gramme |
| 10 % | 100 mg/g | 10 g/100 g | Cent milligrammes par gramme |
| 20 % | 200 mg/g | 20 g/100 g | Deux cents milligrammes par gramme |
| 50 % | 500 mg/g | 50 g/100 g | Cinq cents milligrammes par gramme |
| 100 % | 1 000 mg/g | 100 g/100 g | Produit théoriquement constitué uniquement de la substance |
Passer du pourcentage aux milligrammes par gramme
mg/g = pourcentage × 10
Exemple : un résultat de 12,5 % correspond à :
12,5 × 10 = 125 mg/g.
Pour revenir au pourcentage, il suffit de diviser la valeur en mg/g par 10.
Exemple : 85 mg/g correspond à 8,5 %.
Un pourcentage peut être exprimé en masse par masse, en masse par volume ou selon une autre convention définie par la méthode ou la réglementation applicable.
La conversion directe entre pourcentage et mg/g suppose une expression massique cohérente.
Pour un produit liquide, il faut vérifier si le laboratoire rapporte une masse par masse, une masse par volume ou une valeur calculée à partir de la densité.
Comment lire les milligrammes par gramme ?
L’unité mg/g indique combien de milligrammes de substance sont présents dans un gramme de produit.
10 mg/g
Chaque gramme de produit contient 10 mg de la substance mesurée.
Cela équivaut à 1 % en masse.
100 mg/g
Chaque gramme de produit contient 100 mg de la substance.
Cela équivaut à 10 % en masse.
250 mg/g
Chaque gramme de produit contient 250 mg de la substance.
Cela équivaut à 25 % en masse.
Comment calculer la quantité totale à partir des mg/g ?
Il faut multiplier la concentration par la masse nette du produit conditionné.
Quantité totale en mg = concentration en mg/g × masse en g
Exemple : un produit de 5 g analysé à 80 mg/g contient théoriquement :
80 mg/g × 5 g = 400 mg
La quantité totale calculée est donc de 400 mg pour les 5 grammes.
Produit de 1 gramme
À 100 mg/g, la quantité totale est de 100 mg.
Produit de 5 grammes
À 100 mg/g, la quantité totale est de 500 mg.
Produit de 10 grammes
À 100 mg/g, la quantité totale est de 1 000 mg.
Comment lire les milligrammes par millilitre ?
L’unité mg/ml indique combien de milligrammes de substance sont présents dans un millilitre de produit.
Elle est fréquemment rencontrée pour des formulations liquides, mais elle ne doit pas être confondue avec une concentration exprimée par gramme.
10 mg/ml
Chaque millilitre contient 10 mg de la substance mesurée.
50 mg/ml
Chaque millilitre contient 50 mg de la substance.
100 mg/ml
Chaque millilitre contient 100 mg de la substance.
Comment calculer la quantité totale à partir des mg/ml ?
Quantité totale en mg = concentration en mg/ml × volume en ml
Exemple : un flacon de 10 ml analysé à 50 mg/ml contient théoriquement :
50 mg/ml × 10 ml = 500 mg
La quantité totale calculée est donc de 500 mg dans le flacon.
| Concentration | Volume | Calcul | Quantité totale |
|---|---|---|---|
| 10 mg/ml | 10 ml | 10 × 10 | 100 mg |
| 50 mg/ml | 10 ml | 50 × 10 | 500 mg |
| 100 mg/ml | 10 ml | 100 × 10 | 1 000 mg |
| 100 mg/ml | 30 ml | 100 × 30 | 3 000 mg |
50 mg/ml
Cette valeur décrit la quantité présente dans chaque millilitre de produit.
Elle ne donne pas le contenu total sans connaître le volume du flacon.
500 mg dans 10 ml
Cette valeur décrit la quantité totale théorique contenue dans le conditionnement.
Elle résulte ici de 50 mg/ml multipliés par 10 ml.
Une mention de 100 mg/ml ne signifie pas que le flacon entier contient seulement 100 mg.
Dans un flacon de 10 ml, cette concentration correspond théoriquement à 1 000 mg au total.
À l’inverse, une étiquette annonçant 1 000 mg dans 10 ml correspond à une concentration moyenne théorique de 100 mg/ml.
Peut-on comparer directement des mg/g et des mg/ml ?
Pas toujours. La conversion nécessite de connaître la masse correspondant au volume considéré.
Quantité par masse
La concentration est rapportée à un gramme de produit.
Elle peut être appliquée directement lorsque la masse nette est connue.
Quantité par volume
La concentration est rapportée à un millilitre de produit.
La conversion vers mg/g dépend de la densité de la formulation.
La densité relie les grammes et les millilitres
Un millilitre d’un liquide ne pèse pas nécessairement exactement un gramme.
Pour convertir correctement une concentration en mg/ml vers une concentration en mg/g, il faut connaître la masse volumique ou la densité du produit.
Assimiler systématiquement 1 ml à 1 g peut produire une approximation acceptable dans certains contextes, mais une erreur significative dans d’autres.
Convertir une concentration volumique avec la masse volumique
Imaginons une formulation mesurée à 90 mg/ml et dont 1 ml pèse 0,90 g.
La concentration massique est alors :
90 mg/ml ÷ 0,90 g/ml = 100 mg/g
Cette concentration correspond à 10 % en masse.
Sans information sur la masse volumique, la conversion resterait approximative.
Comment convertir microgrammes, milligrammes et grammes ?
Un gramme
1 g équivaut à 1 000 mg.
Il équivaut également à 1 000 000 µg.
Un milligramme
1 mg équivaut à 0,001 g.
Il équivaut également à 1 000 µg.
Un microgramme
1 µg équivaut à 0,001 mg.
Il équivaut à un millionième de gramme.
| Valeur initiale | En grammes | En milligrammes | En microgrammes |
|---|---|---|---|
| 1 g | 1 g | 1 000 mg | 1 000 000 µg |
| 0,1 g | 0,1 g | 100 mg | 100 000 µg |
| 1 mg | 0,001 g | 1 mg | 1 000 µg |
| 1 µg | 0,000001 g | 0,001 mg | 1 µg |
Que signifie ppm dans un rapport d’analyse ?
Ppm signifie « parties par million ». Cette expression est souvent utilisée pour présenter de faibles concentrations.
Sur une base massique, 1 ppm correspond à 1 mg/kg, soit également 1 µg/g.
Un milligramme par kilogramme
Sur une base massique, 1 ppm équivaut à 1 mg/kg.
Dix milligrammes par kilogramme
Sur une base massique, 10 ppm équivalent à 10 mg/kg.
Cent milligrammes par kilogramme
Sur une base massique, 100 ppm équivalent à 100 mg/kg.
Que signifie ppb ?
Ppb signifie « parties par milliard ».
Sur une base massique, 1 ppb correspond à 1 µg/kg, soit 0,001 mg/kg.
Un microgramme par kilogramme
Cette concentration représente une très faible quantité rapportée à un kilogramme de matière.
Mille ppb
1 000 ppb correspondent à 1 ppm.
Conversion vers mg/kg
1 ppb correspond à 0,001 mg/kg.
| Expression | Équivalent massique | Autre équivalence | Échelle |
|---|---|---|---|
| 1 ppm | 1 mg/kg | 1 µg/g | Une partie par million |
| 10 ppm | 10 mg/kg | 10 µg/g | Dix parties par million |
| 1 ppb | 1 µg/kg | 0,001 mg/kg | Une partie par milliard |
| 1 000 ppb | 1 000 µg/kg | 1 mg/kg | Équivaut à 1 ppm |
Dans les rapports, ppm peut parfois être utilisé de manière pratique pour une concentration massique, volumique ou massique par volume.
L’équivalence exacte avec mg/l ou µg/l dépend du contexte, de la convention utilisée et éventuellement de la densité du liquide.
Pour éviter une mauvaise conversion, il est préférable de rechercher l’unité complète indiquée par le laboratoire.
Quelle différence entre matière brute et matière sèche ?
L’eau présente dans l’échantillon peut modifier la concentration exprimée par rapport à sa masse totale.
Résultat sur le produit tel qu’analysé
La masse de l’eau fait partie de la masse totale utilisée dans le calcul.
Une matière plus humide peut donc afficher une concentration massique plus faible, même si sa matière sèche est comparable.
Résultat rapporté après exclusion de l’eau
La concentration est recalculée par rapport à la masse de matière sèche.
Elle est généralement plus élevée que la valeur brute lorsque l’échantillon contient de l’humidité.
Pourquoi la valeur sur matière sèche peut être plus élevée
Imaginons un échantillon contenant 10 % d’eau et présentant 90 mg/g sur matière brute.
La fraction de matière sèche est alors de 90 %, soit 0,90.
90 mg/g ÷ 0,90 = 100 mg/g sur matière sèche
Le même échantillon peut donc être présenté à 90 mg/g brut ou 100 mg/g sur matière sèche.
Les deux chiffres décrivent la même matière, mais sur deux bases différentes.
Convertir une valeur brute en valeur sur matière sèche
Valeur sur matière sèche = valeur brute ÷ fraction de matière sèche.
La fraction de matière sèche correspond à : 1 − fraction d’humidité.
Cette conversion suppose que l’humidité a été correctement mesurée et que les deux résultats concernent le même échantillon.
Deux rapports peuvent sembler contradictoires alors qu’ils utilisent simplement des bases d’expression différentes.
Avant de comparer deux résultats, vérifiez la présence des mentions « as received », « as is », « dry basis », « matière brute » ou « matière sèche ».
L’humidité associée doit également être connue si une conversion est nécessaire.
Plus de décimales signifie-t-il plus de précision ?
Pas nécessairement. Le nombre de chiffres affichés doit rester cohérent avec les performances de la méthode et l’incertitude.
Résultat raisonnablement arrondi
Une présentation adaptée évite de suggérer une exactitude supérieure à celle de la mesure.
Précision visuelle trompeuse
Plusieurs décimales peuvent simplement provenir d’un calcul informatique sans être toutes significatives.
L’arrondi peut modifier l’apparence d’un résultat
Une valeur calculée à 0,297 peut être affichée à 0,30 selon le nombre de décimales retenu.
Lorsqu’un résultat se trouve près d’un seuil, la règle d’arrondi et l’incertitude peuvent devenir importantes pour la conclusion de conformité.
Un voyant vert ou rouge ne doit donc pas remplacer la lecture du résultat numérique et de sa règle de décision.
Comment comparer une étiquette au rapport de laboratoire ?
Il faut d’abord mettre les deux informations dans la même unité et sur la même base.
Identifier l’annonce
L’étiquette annonce-t-elle un pourcentage, une concentration ou une quantité totale ?
Identifier le résultat
Le laboratoire rapporte-t-il des mg/g, des mg/ml ou une autre unité ?
Convertir sur la même base
Les deux valeurs doivent être exprimées dans une unité comparable.
Utiliser la quantité nette
Masse ou volume total permet de calculer la quantité réellement contenue.
Vérifier la substance
CBD, CBD total, extrait de chanvre et cannabinoïdes totaux ne sont pas des expressions automatiquement équivalentes.
Tenir compte des tolérances
Une différence ne permet pas à elle seule de conclure sans connaître les spécifications et l’incertitude.
Étiquette annonçant 1 000 mg dans un flacon de 10 ml
La concentration théorique annoncée est :
1 000 mg ÷ 10 ml = 100 mg/ml
Si le rapport indique 98 mg/ml, la quantité totale calculée sur 10 ml est :
98 mg/ml × 10 ml = 980 mg
L’écart apparent est donc de 20 mg par rapport à la valeur annoncée.
Pour conclure, il faudrait encore connaître la tolérance de fabrication, le volume réel, la méthode et l’incertitude de mesure.
Une formulation peut contenir 20 % d’un extrait qui ne contient lui-même qu’une fraction de CBD.
Par exemple, 20 % d’un extrait dosé à 50 % de CBD correspond théoriquement à environ 10 % de CBD dans la formulation avant prise en compte des autres variations.
La quantité d’ingrédient ajouté et la concentration de la substance dans cet ingrédient ne doivent pas être confondues.
Pourcentage d’extrait × pureté de l’extrait
Exemple : une formulation contient 15 % d’un extrait analysé à 60 % de CBD.
Le dosage théorique en CBD est : 15 % × 60 % = 9 %.
Ce calcul constitue une estimation de formulation. L’analyse du produit fini permet de vérifier la concentration réellement obtenue.
Pourquoi leurs unités sont-elles souvent beaucoup plus petites ?
Les contaminants sont généralement recherchés à des concentrations bien inférieures à celles des constituants principaux.
Milligrammes par kilogramme
Unité fréquemment utilisée pour exprimer certaines limites de contaminants.
Microgrammes par kilogramme
Permet de présenter des concentrations mille fois plus faibles que le mg/kg.
Unités microbiologiques
Les microorganismes peuvent être exprimés en unités formant colonie par gramme ou selon une présence dans une quantité définie.
Une concentration chimique en mg/kg ne peut pas être convertie directement en dénombrement microbiologique en UFC/g.
De même, une présence ou absence dans 25 g ne correspond pas à une concentration chiffrée simple.
Chaque unité doit être interprétée selon le type d’essai et la nature du résultat.
Comment lire une notation scientifique ?
Certains rapports utilisent des puissances de dix pour présenter des valeurs très faibles ou très élevées.
Mille
1 × 10³ correspond à 1 000.
Un millième
1 × 10⁻³ correspond à 0,001.
Écriture informatique
2,5E−4 signifie 2,5 × 10⁻⁴, soit 0,00025.
Le point peut remplacer la virgule décimale
Dans un rapport anglophone, 0.25 signifie 0,25 et non vingt-cinq.
La virgule peut également être utilisée comme séparateur de milliers dans certains documents.
Il faut donc identifier la convention utilisée avant de recopier ou de convertir une valeur.
« CBD : 98 »
Sans unité, il est impossible de savoir s’il s’agit d’un pourcentage, de mg/g, de mg/ml ou d’une autre expression.
Le chiffre seul ne permet pas une comparaison sérieuse.
« CBD : 98 mg/g, sur matière brute »
La valeur, l’unité et la base sont clairement indiquées.
Elle peut être convertie en 9,8 % en masse et comparée à une annonce équivalente.
Comment contrôler un dosage sans se tromper ?
Recopier la valeur exacte
Conservez les décimales et le signe tels qu’ils apparaissent sur le rapport.
Recopier l’unité
%, mg/g, mg/ml, mg/kg ou µg/kg ne doivent jamais être omis.
Identifier la base
Matière brute, sèche, masse, volume ou quantité totale.
Vérifier la quantité nette
Utilisez la masse ou le volume réel du conditionnement concerné.
Effectuer une seule conversion
Transformez les deux valeurs dans une unité commune avant de les comparer.
Contrôler l’ordre de grandeur
Un résultat impossible ou multiplié par mille révèle souvent une erreur d’unité.
Une concentration de 100 mg/g correspond à 10 %.
Si votre conversion donne 1 000 % ou 0,01 %, une unité ou un facteur mille a probablement été mal appliqué.
Vérifier l’ordre de grandeur permet de repérer rapidement de nombreuses erreurs de calcul.
Les erreurs d’unités les plus fréquentes
- Comparer un pourcentage à des mg/ml sans conversion.
- Confondre la concentration avec la quantité totale du flacon.
- Multiplier une valeur en mg/g par un volume en ml.
- Supposer que 1 ml pèse toujours exactement 1 g.
- Confondre le pourcentage d’extrait avec le pourcentage de CBD.
- Oublier qu’un gramme contient 1 000 milligrammes.
- Confondre mg/kg, µg/kg, ppm et ppb.
- Comparer une valeur brute à une valeur sur matière sèche.
- Lire 0.25 comme vingt-cinq au lieu de 0,25.
- Utiliser un résultat arrondi pour une décision proche d’un seuil.
- Recopier la valeur sans son unité.
- Convertir une unité microbiologique en concentration chimique.
Les conversions rapides à retenir
Pourcentage vers mg/g
Multipliez le pourcentage par 10.
8 % devient 80 mg/g.
Mg/g vers pourcentage
Divisez les mg/g par 10.
120 mg/g deviennent 12 %.
Mg/g vers quantité totale
Multipliez par la masse en grammes.
80 mg/g dans 5 g donnent 400 mg.
Mg/ml vers quantité totale
Multipliez par le volume en millilitres.
50 mg/ml dans 10 ml donnent 500 mg.
Parties par million
Sur une base massique, 1 ppm correspond à 1 mg/kg.
Parties par milliard
Sur une base massique, 1 ppb correspond à 1 µg/kg.
Les quinze questions à poser
- Chaque résultat comporte-t-il une unité ?
- Le pourcentage est-il exprimé en masse ou en volume ?
- La concentration est-elle rapportée par gramme ou par millilitre ?
- La masse ou le volume total du produit est-il connu ?
- La quantité totale annoncée peut-elle être recalculée ?
- La densité est-elle nécessaire pour effectuer la conversion ?
- La valeur est-elle exprimée sur matière brute ou sèche ?
- L’humidité de l’échantillon est-elle disponible ?
- Les ppm reposent-ils sur une base massique clairement identifiée ?
- Les microgrammes et milligrammes ont-ils été correctement convertis ?
- Le pourcentage concerne-t-il le CBD ou un extrait complet ?
- Les deux valeurs comparées portent-elles sur la même substance ?
- Le nombre de décimales est-il cohérent avec la méthode ?
- L’arrondi peut-il influencer la comparaison à un seuil ?
- Le résultat final présente-t-il un ordre de grandeur réaliste ?
- Les résultats sont présentés sans unité.
- L’unité change d’une page à l’autre sans explication.
- Une concentration est présentée comme la quantité totale.
- Le volume du flacon ne permet pas de retrouver la quantité annoncée.
- Des mg/g sont multipliés directement par des millilitres.
- La densité est ignorée alors qu’une conversion masse-volume est faite.
- Un pourcentage d’extrait est présenté comme un pourcentage de CBD.
- Une valeur sur matière sèche est comparée à une étiquette sur produit brut.
- Les ppm sont assimilés automatiquement à des mg/l sans contexte.
- Un facteur mille semble manquer dans la conversion.
- Le résultat comporte un nombre excessif de décimales.
- La conclusion repose sur un chiffre arrondi situé exactement au seuil.
Une valeur sans unité peut impressionner, mais elle ne permet ni de comparer, ni de convertir, ni de vérifier une étiquette.
Nous considérons qu’un rapport destiné à informer le public doit présenter des unités lisibles et suffisamment explicites pour permettre une vérification indépendante.
La concentration par gramme ou par millilitre, la quantité totale du conditionnement et la base de calcul doivent rester clairement distinguées.
Une conversion commerciale ne devrait jamais masquer l’unité originale utilisée par le laboratoire.
Nous apprendrons à lire le profil cannabinoïde : CBD, CBDA, THC, THCA, cannabinoïdes minoritaires, formes acides et neutres, valeurs individuelles et calculs de CBD total ou de THC total.
Comment lire le profil cannabinoïde d’une analyse CBD ?
Un profil cannabinoïde peut distinguer le CBD, le CBDA, le delta-9-THC, le THCA et plusieurs cannabinoïdes minoritaires. Ces lignes ne doivent pas être additionnées sans comprendre leur forme chimique et la méthode de calcul utilisée.
Il faut notamment distinguer les valeurs directement mesurées des valeurs « totales » calculées à partir des formes acides et neutres.
CBD et CBDA sont deux lignes distinctes, tout comme delta-9-THC et THCA. Une valeur « totale » est généralement calculée en appliquant un facteur de conversion à la forme acide avant de l’ajouter à la forme neutre.
Qu’est-ce qu’un profil cannabinoïde ?
Il s’agit d’un ensemble de résultats consacrés à plusieurs cannabinoïdes recherchés dans un même échantillon.
Le tableau peut présenter les substances individuellement, leurs concentrations, leurs unités, leurs limites analytiques et parfois des valeurs totales calculées.
Identification
Le laboratoire recherche des cannabinoïdes définis dans le domaine de sa méthode.
Quantification
Chaque substance peut recevoir une valeur exprimée en pourcentage, en mg/g, en mg/ml ou dans une autre unité.
Limites analytiques
Certaines lignes peuvent être rapportées comme non détectées, non quantifiées ou inférieures à une limite.
Formes chimiques
Les formes acides et neutres peuvent être présentées séparément.
Valeurs totales
Certaines valeurs sont calculées afin d’estimer le potentiel après conversion d’une forme acide.
Cannabinoïdes minoritaires
CBG, CBGA, CBC, CBDV ou d’autres composés peuvent apparaître selon le panel utilisé.
Quelle différence entre une forme acide et une forme neutre ?
Le CBDA et le THCA sont des cannabinoïdes distincts du CBD et du delta-9-THC.
Sous l’effet de la chaleur, du temps ou de certaines conditions, une forme acide peut perdre une partie de sa structure lors d’un processus appelé décarboxylation.
CBDA, THCA et CBGA
Elles comportent un groupe chimique supplémentaire qui peut être perdu pendant la décarboxylation.
Elles doivent être rapportées séparément lorsque la méthode permet de les distinguer.
CBD, delta-9-THC et CBG
Elles peuvent être présentes initialement dans l’échantillon ou résulter en partie d’une transformation des formes acides.
Leur concentration est généralement rapportée sur une ligne distincte du tableau.
Les paires que l’on rencontre fréquemment
CBDA vers CBD
Le CBDA est la forme acide associée au CBD dans les calculs de CBD total.
THCA vers delta-9-THC
Le THCA est pris en compte avec le delta-9-THC dans certains calculs de THC total.
CBGA vers CBG
Le même principe de conversion massique peut être appliqué lorsqu’un total CBG est défini par la méthode.
Pourquoi la forme acide n’est-elle pas simplement additionnée à la forme neutre ?
Pendant la décarboxylation, la molécule acide perd une partie de sa masse sous forme de dioxyde de carbone.
Un milligramme de CBDA ne peut donc pas produire un milligramme complet de CBD après conversion.
Un facteur de correction basé sur les masses moléculaires est appliqué avant l’addition.
Pour le CBDA et le THCA, le facteur couramment utilisé dans ces calculs est de 0,877.
Comment calculer le CBD total ?
CBD total = CBD + (CBDA × 0,877)
La valeur mesurée de CBDA est d’abord multipliée par 0,877 afin d’estimer la quantité théorique de CBD correspondante après décarboxylation.
Cette valeur corrigée est ensuite ajoutée au CBD déjà présent sous forme neutre.
Un échantillon contient 40 mg/g de CBD et 80 mg/g de CBDA
Première étape : 80 mg/g × 0,877 = 70,16 mg/g.
Deuxième étape : 40 mg/g + 70,16 mg/g = 110,16 mg/g.
Le CBD total calculé est donc d’environ 110,16 mg/g, soit environ 11,02 % sur la même base.
| CBD mesuré | CBDA mesuré | CBDA corrigé | CBD total calculé |
|---|---|---|---|
| 20 mg/g | 0 mg/g | 0 mg/g | 20 mg/g |
| 20 mg/g | 50 mg/g | 43,85 mg/g | 63,85 mg/g |
| 40 mg/g | 80 mg/g | 70,16 mg/g | 110,16 mg/g |
| 100 mg/g | 100 mg/g | 87,70 mg/g | 187,70 mg/g |
Comment calculer le THC total ?
THC total = delta-9-THC + (THCA × 0,877)
Le THCA est multiplié par 0,877 afin d’estimer sa contribution théorique en delta-9-THC après décarboxylation.
Cette contribution est ajoutée au delta-9-THC déjà mesuré dans l’échantillon.
Le résultat doit rester associé à la base d’expression, à l’unité, à l’incertitude et au référentiel dans lequel il est utilisé.
Un échantillon contient 0,10 % de delta-9-THC et 0,20 % de THCA
Première étape : 0,20 % × 0,877 = 0,1754 %.
Deuxième étape : 0,10 % + 0,1754 % = 0,2754 %.
Le THC total calculé est donc d’environ 0,275 % avant application des règles d’arrondi ou de décision du référentiel concerné.
| Delta-9-THC | THCA | THCA corrigé | THC total calculé |
|---|---|---|---|
| 0,10 % | 0 % | 0 % | 0,10 % |
| 0,10 % | 0,10 % | 0,0877 % | 0,1877 % |
| 0,10 % | 0,20 % | 0,1754 % | 0,2754 % |
| 0,20 % | 0,20 % | 0,1754 % | 0,3754 % |
Il est impossible d’appliquer directement la formule si le CBD est exprimé en mg/g et le CBDA en pourcentage.
Il faut d’abord convertir les deux valeurs dans une unité commune et vérifier qu’elles reposent sur la même base : matière brute, matière sèche, masse ou volume.
La même précaution s’applique au calcul du THC total.
Quelle différence entre une valeur mesurée et une valeur totale calculée ?
Concentration obtenue pour une substance précise
Le CBD, le CBDA, le delta-9-THC et le THCA sont déterminés séparément lorsque la méthode permet de les distinguer.
Chaque ligne reste associée aux performances et aux limites de la méthode.
Combinaison mathématique de plusieurs résultats
Le CBD total ou le THC total est généralement calculé à partir des valeurs mesurées des formes acides et neutres.
Il ne s’agit pas nécessairement d’une nouvelle mesure indépendante réalisée par l’appareil.
Le total calculé représente un potentiel théorique
Le calcul suppose une conversion de la forme acide vers la forme neutre en appliquant le facteur massique prévu.
Il ne garantit pas qu’une transformation réelle produira exactement cette quantité dans toutes les conditions.
Des pertes, une conversion incomplète, une dégradation ou d’autres réactions peuvent intervenir pendant un traitement réel.
CBD total = CBD + CBDA
Cette addition ne tient pas compte de la perte de masse associée à la décarboxylation du CBDA.
Elle surestime donc la quantité théorique de CBD obtenue à partir de la forme acide.
CBD total = CBD + (CBDA × 0,877)
Le facteur applique la correction massique avant l’addition avec le CBD neutre.
La formule utilisée doit idéalement apparaître dans le rapport ou dans la méthode.
La méthode distingue-t-elle réellement les formes acides ?
La capacité à rapporter séparément le CBD, le CBDA, le delta-9-THC et le THCA dépend de la méthode utilisée et de son domaine de validation.
Séparation sans conversion préalable recherchée
Certaines méthodes de chromatographie liquide peuvent quantifier séparément plusieurs formes acides et neutres.
La méthode doit néanmoins être validée pour les composés et la matrice concernés.
Effet possible de la température
Une méthode utilisant une température élevée peut transformer tout ou partie des formes acides pendant l’analyse.
La préparation et le mode de calcul deviennent alors essentiels pour comprendre le résultat rapporté.
La mention « THC » est-elle suffisamment précise ?
Pas toujours. Le rapport doit idéalement indiquer quelle forme ou quel isomère a été recherché.
Delta-9-THC, THCA, delta-8-THC et d’autres substances ne doivent pas être regroupés sous une appellation vague sans explication.
Delta-9-THC
Forme neutre généralement distinguée du THCA dans les profils détaillés.
Acide tétrahydrocannabinolique
Forme acide pouvant contribuer au calcul du THC total.
Autres formes
Elles doivent être identifiées séparément lorsque leur recherche fait partie du panel.
Dans de nombreux rapports, le THC total désigne spécifiquement le delta-9-THC additionné à la contribution corrigée du THCA.
Cette expression n’inclut pas automatiquement le delta-8-THC, le THCV ou toute autre substance contenant le terme THC.
Il faut lire la formule ou la définition fournie par le laboratoire.
Comment lire les cannabinoïdes minoritaires ?
Leur présence peut apporter des informations supplémentaires sur le profil de l’échantillon, mais elle doit rester interprétée dans les limites du panel et de la méthode.
Cannabigérol
Peut être rapporté séparément du CBGA.
Cannabichromène
Peut apparaître à une concentration plus faible que les constituants principaux.
Cannabidivarine
Sa présence dépend notamment du profil de la matière et de la capacité de la méthode à la séparer.
Tétrahydrocannabivarine
Elle ne doit pas être confondue avec le delta-9-THC malgré la proximité de certaines appellations.
Cannabinol
Sa valeur peut être examinée avec le reste du profil, sans conclure à elle seule sur l’âge ou le stockage.
Autres cannabinoïdes
Leur absence du tableau peut signifier qu’ils ne faisaient pas partie du panel.
Une substance absente du rapport n’est pas nécessairement absente du produit
Elle peut simplement ne pas avoir été incluse dans le panel demandé au laboratoire.
Pour conclure qu’une substance a été recherchée, il faut retrouver son nom, un résultat et les limites analytiques correspondantes.
Une liste courte ne constitue donc pas automatiquement un profil cannabinoïde complet.
Que signifie « cannabinoïdes totaux » ?
Cette expression peut désigner la somme de plusieurs cannabinoïdes, mais sa définition dépend du laboratoire ou du référentiel.
Certains calculs additionnent les formes neutres et les formes acides corrigées. D’autres peuvent utiliser une sélection plus limitée de substances.
Rechercher la définition
Le rapport doit expliquer quels cannabinoïdes sont inclus dans l’addition.
Vérifier les corrections
Les formes acides ne doivent pas être additionnées mécaniquement sans facteur lorsqu’une correction de décarboxylation est prévue.
Vérifier le panel
Un total calculé sur six cannabinoïdes ne peut pas être comparé directement à un total calculé sur quinze substances.
Vérifier les unités
Toutes les valeurs additionnées doivent être exprimées sur la même base.
Une marque peut afficher « 25 % de cannabinoïdes » sans expliquer les substances additionnées.
Ce chiffre peut être supérieur au CBD total parce qu’il inclut plusieurs cannabinoïdes.
Il ne doit pas être présenté comme un taux de CBD si d’autres composés participent au calcul.
Comment comparer le profil à l’étiquette ?
Identifier la mention
L’étiquette annonce-t-elle du CBD, du CBD total, un extrait ou des cannabinoïdes totaux ?
Rechercher la bonne ligne
La comparaison doit porter sur la valeur correspondant réellement à l’annonce.
Uniformiser l’unité
Pourcentage, mg/g et mg/ml doivent être convertis sur une base comparable.
Vérifier le calcul
La valeur totale peut être recalculée à partir des formes individuelles.
Examiner l’écart
Une différence doit être interprétée avec la spécification, l’arrondi et l’incertitude.
Vérifier le lot
Le calcul n’est utile que si le rapport correspond au produit réellement examiné.
L’étiquette annonce 10 % de CBD
Le rapport présente 60 mg/g de CBD et 50 mg/g de CBDA.
Le CBD total est :
60 + (50 × 0,877) = 103,85 mg/g
En pourcentage massique :
103,85 mg/g ÷ 10 = 10,385 %
Le résultat est donc proche de 10,4 % de CBD total sur la même base.
Il faut toutefois savoir si l’étiquette désigne le CBD neutre uniquement ou le CBD total calculé.
Un profil cannabinoïde complet prouve-t-il la qualité globale ?
Non. Il documente la composition cannabinoïde dans les limites du panel et de la méthode.
Les cannabinoïdes recherchés
Il aide à vérifier les concentrations, la cohérence avec l’étiquette et la présence de certaines formes.
Il peut également révéler des écarts entre plusieurs lots.
L’absence générale de contaminants
Un profil cannabinoïde ne remplace pas les analyses de pesticides, métaux, microorganismes ou solvants.
Ces essais doivent apparaître dans des rubriques spécifiques.
Quelles incohérences peut-on repérer ?
Total supérieur à 100 %
Une telle valeur exige de vérifier les unités, la base, les calculs et la présentation du résultat.
Total différent de la somme
Le facteur de correction, les arrondis ou la définition du total doivent expliquer l’écart.
Unités mélangées
Des mg/g et des pourcentages ne doivent pas être additionnés sans conversion.
Substance annoncée mais absente
Le rapport peut ne pas correspondre au produit, au lot ou au panel attendu.
Formule non expliquée
Un CBD total ou THC total ne peut pas être vérifié sans connaître les lignes incluses.
Panel trop limité
Une courte liste ne permet pas d’exclure les cannabinoïdes qui n’ont pas été recherchés.
Conservez les valeurs non arrondies jusqu’à la fin du calcul
Arrondir le CBDA ou le THCA avant d’appliquer le facteur peut légèrement modifier le total final.
Il est préférable d’effectuer le calcul avec les valeurs disponibles, puis d’arrondir le résultat selon la règle définie.
Cette précaution devient particulièrement importante lorsque le résultat se situe près d’une limite.
La réponse dépend de la convention utilisée par le laboratoire et de la règle appliquée aux résultats inférieurs aux limites analytiques.
Une valeur « ND » ne doit pas être remplacée arbitrairement par zéro, par la LOD ou par la LOQ sans connaître la méthode de calcul.
Cette question sera détaillée dans la partie consacrée aux mentions LOD, LOQ, ND et NQ.
Comment contrôler rapidement le profil cannabinoïde ?
Identifier les lignes
Repérez le CBD, le CBDA, le delta-9-THC et le THCA.
Vérifier les unités
Toutes les valeurs comparées doivent être exprimées sur la même base.
Repérer les totaux
Distinguez les résultats mesurés des valeurs calculées.
Refaire le calcul
Appliquez le facteur indiqué et contrôlez l’arrondi.
Comparer à l’étiquette
Vérifiez que la mention commerciale désigne la même valeur.
Contrôler les limites
Repérez les résultats proches d’une LOD, d’une LOQ ou d’un seuil.
Les quinze questions à poser
- Le CBD et le CBDA sont-ils présentés séparément ?
- Le delta-9-THC et le THCA sont-ils distingués ?
- Les unités sont-elles identiques pour toutes les lignes comparées ?
- Les résultats reposent-ils sur la même base d’expression ?
- La méthode permet-elle de distinguer les formes acides et neutres ?
- Le CBD total est-il mesuré ou calculé ?
- Le THC total est-il mesuré ou calculé ?
- La formule de calcul apparaît-elle dans le rapport ?
- Le facteur de conversion est-il identifiable ?
- Le total peut-il être recalculé à partir des lignes individuelles ?
- Les arrondis expliquent-ils les petits écarts ?
- Les cannabinoïdes mineurs absents ont-ils été recherchés ?
- La définition des cannabinoïdes totaux est-elle précisée ?
- L’étiquette parle-t-elle de CBD, de CBD total ou d’extrait ?
- Le résultat correspond-il au bon produit et au bon lot ?
- Le rapport regroupe toutes les formes sous le seul terme « THC ».
- Le CBD et le CBDA sont additionnés sans facteur de correction.
- Le delta-9-THC et le THCA sont additionnés directement.
- Le total est présenté sans formule.
- Les unités diffèrent entre les lignes additionnées.
- Une valeur sur matière sèche est mélangée à une valeur brute.
- Le résultat calculé ne correspond pas aux valeurs individuelles.
- Un pourcentage de cannabinoïdes totaux est présenté comme du CBD.
- La marque transforme une analyse de cannabinoïdes en garantie générale de sécurité.
- Une substance absente du tableau est annoncée comme « non détectée ».
- Le nom exact de l’isomère recherché n’apparaît pas.
- Le résultat situé près d’un seuil est fortement arrondi.
Dans un profil cannabinoïde, les formes acides, les formes neutres et les valeurs totales ne sont pas trois façons d’écrire le même résultat.
Nous considérons que les valeurs individuelles doivent rester visibles, même lorsqu’un laboratoire fournit un CBD total ou un THC total.
La formule, le facteur de conversion, l’unité et la base d’expression doivent permettre au lecteur de refaire le calcul.
Une valeur totale ne devrait jamais être utilisée pour masquer la composition détaillée ou transformer un panel limité en preuve générale de qualité.
Nous apprendrons à interpréter les mentions LOD, LOQ, non détecté, non quantifié, résultat inférieur à une limite, incertitude de mesure et valeurs proches d’un seuil.
Comment comprendre LOD, LOQ, ND et l’incertitude de mesure ?
Les mentions « non détecté », « inférieur à la limite » ou « non quantifiable » ne signifient pas nécessairement que la substance est totalement absente de l’échantillon.
Pour interpréter correctement ces résultats, il faut connaître la limite de détection, la limite de quantification, l’unité utilisée et les performances de la méthode pour la matrice analysée.
ND ne signifie pas zéro. Cela signifie généralement que la méthode n’a pas détecté la substance au-dessus de sa limite de détection dans les conditions de l’analyse.
Que signifient LOD, LOQ, ND et NQ ?
Limite de détection
Niveau à partir duquel la méthode peut distinguer la présence probable d’un signal de l’absence de signal mesurable.
La substance peut être repérée sans être encore suffisamment mesurée pour fournir une valeur fiable.
Limite de quantification
Niveau à partir duquel une concentration chiffrée peut être rapportée avec des performances suffisamment définies.
Elle est généralement supérieure à la limite de détection.
Non détecté
Aucun signal répondant aux critères de détection n’a été mis en évidence au-dessus de la LOD.
Une quantité plus faible peut néanmoins être présente sous cette limite.
Non quantifié
Un signal peut avoir été observé, mais sa concentration reste trop faible pour être chiffrée avec les performances prévues.
Le résultat se situe généralement entre la LOD et la LOQ.
De l’absence de signal à la quantification
Sous la limite de détection
La méthode ne permet pas de distinguer suffisamment le signal de la variabilité de fond.
Le laboratoire peut rapporter « ND » ou « inférieur à la LOD ».
Détecté mais non quantifiable
La présence d’un signal peut être considérée comme probable, mais la valeur reste trop incertaine pour être rapportée comme une quantification ordinaire.
Le laboratoire peut indiquer « NQ », « trace » ou « inférieur à la LOQ ».
Résultat quantifiable
La concentration entre dans le domaine dans lequel la méthode permet une valeur chiffrée.
Elle reste toutefois associée à une incertitude de mesure.
Pourquoi « non détecté » ne signifie-t-il pas absence absolue ?
Toute méthode possède une capacité de détection limitée. Une quantité inférieure à cette capacité peut rester invisible dans les conditions du contrôle.
ND signifie que la concentration est exactement égale à zéro
Le laboratoire n’a généralement pas démontré une absence moléculaire totale.
Il indique que la substance n’a pas été détectée au-dessus de la limite définie par sa méthode.
La concentration est inférieure à la capacité de détection
La valeur réelle peut être nulle, très faible ou située sous la LOD.
La limite chiffrée doit être connue pour comprendre la portée du résultat.
Résultat : ND — LOD : 0,01 %
Le rapport indique que la substance n’a pas été détectée au-dessus de 0,01 % dans les conditions de la méthode.
Il ne permet pas de distinguer une concentration nulle d’une concentration de 0,005 %, par exemple, si cette valeur reste sous la limite de détection.
Pour interpréter la mention ND, la valeur de la LOD est donc indispensable.
Que signifie « détecté, mais non quantifié » ?
Le laboratoire observe un signal répondant à ses critères de détection, mais la concentration reste inférieure au niveau requis pour une quantification suffisamment maîtrisée.
Présence analytique probable
La substance peut être signalée comme détectée, trace ou positive sous la LOQ.
Cette indication ne fournit pas nécessairement une concentration exploitable.
Valeur insuffisamment maîtrisée
Une estimation instrumentale peut exister, mais elle ne respecte pas les critères retenus pour une quantification ordinaire.
Le laboratoire peut choisir de ne pas publier cette valeur approximative.
LOD à 0,01 % et LOQ à 0,03 %
Si aucun signal suffisant n’est observé au-dessus de 0,01 %, le résultat peut être rapporté comme non détecté.
Si un signal est observé entre 0,01 % et 0,03 %, la substance peut être détectée mais non quantifiée.
À partir de 0,03 %, une valeur chiffrée peut être rapportée si les autres critères de la méthode sont respectés.
Ces limites sont propres à l’exemple : elles peuvent être différentes selon le laboratoire, la méthode et la matrice.
| Situation | Position par rapport aux limites | Présentation possible | Interprétation |
|---|---|---|---|
| Aucun signal suffisant | Résultat inférieur à la LOD | ND ou < LOD | Substance non détectée au niveau de sensibilité de la méthode |
| Signal faible | Entre LOD et LOQ | NQ, trace ou < LOQ | Présence possible ou probable, concentration non quantifiable |
| Signal quantifiable | Égal ou supérieur à la LOQ | Valeur chiffrée | Concentration rapportée dans le domaine de quantification |
| Résultat hors plage haute | Supérieur au domaine validé | > limite supérieure ou nouvelle dilution | Une préparation complémentaire peut être nécessaire |
La LOD et la LOQ sont-elles identiques dans tous les laboratoires ?
Non. Elles dépendent de la méthode, de l’équipement, de la préparation, de la matrice et des performances démontrées.
La matrice
Une huile, une matière végétale et une crème ne produisent pas les mêmes interférences.
La sensibilité peut donc varier selon le type d’échantillon.
La préparation
La masse prélevée, la dilution et le rendement d’extraction influencent la quantité finalement présentée à l’instrument.
L’instrumentation
Le type de détecteur, son état et les conditions analytiques influencent la capacité de détection.
Le bruit de fond
Des signaux parasites peuvent limiter la distinction d’une très faible concentration.
La substance recherchée
Tous les composés ne produisent pas la même réponse dans un système analytique donné.
Les critères retenus
Les règles utilisées pour définir la détection et la quantification peuvent différer selon les méthodes.
ND avec une LOD de 0,10 %
La méthode ne détecte pas la substance au-dessus de 0,10 %.
Une concentration de 0,05 % pourrait donc rester non détectée.
ND avec une LOD de 0,01 %
La méthode possède une capacité de détection dix fois plus basse dans cet exemple.
Les deux mentions ND n’apportent donc pas le même niveau d’information.
Une limite analytique doit être suffisamment basse par rapport au seuil contrôlé
Si un contrôle doit permettre d’évaluer une limite de 0,30 %, une LOQ supérieure à cette valeur serait insuffisante pour quantifier correctement la zone décisive.
Une méthode peut être techniquement valide tout en étant mal adaptée à une exigence particulière.
Il faut donc comparer les limites de la méthode à la valeur que l’on souhaite réellement contrôler.
Comment les résultats inférieurs aux limites peuvent-ils être écrits ?
Non détecté
Mention abrégée indiquant généralement un résultat inférieur à la limite de détection.
Inférieur à la LOD
Présentation plus explicite lorsque la valeur de la limite est indiquée dans le tableau.
Non quantifié
Peut signaler une détection sous la limite de quantification.
Inférieur à la LOQ
La concentration se situe sous le niveau de quantification défini.
Trace
Terme qui doit être défini par le laboratoire pour éviter une interprétation ambiguë.
Zéro affiché
Peut provenir d’un arrondi ou d’une convention informatique et doit être interprété avec prudence.
Certains systèmes remplacent automatiquement les résultats inférieurs à une limite par 0 ou 0,00.
Cette pratique peut masquer la différence entre une absence réelle, une valeur non détectée et un résultat arrondi.
La légende du rapport doit indiquer la convention utilisée pour les valeurs situées sous les limites.
Un laboratoire peut-il afficher un chiffre inférieur à sa LOQ ?
Cela peut arriver, mais le statut de cette valeur doit être clairement indiqué.
Valeur estimée
L’instrument peut produire une estimation numérique sous la LOQ.
Cette valeur ne bénéficie pas nécessairement des performances habituelles de quantification.
Résultat signalé
Un symbole, une note ou un qualificatif doit permettre de distinguer cette estimation d’un résultat pleinement quantifié.
Elle ne doit pas être utilisée comme une valeur ordinaire sans tenir compte de cette réserve.
Peut-on remplacer automatiquement ND par zéro ?
Non. Le traitement dépend de l’objectif du calcul, de la distribution des résultats et de la convention retenue.
Remplacement par zéro
Il peut sous-estimer la concentration réelle lorsque des quantités faibles sont présentes sous la limite.
Remplacement par la LOD
Il peut au contraire surestimer certains résultats dont la valeur réelle est plus basse.
Fraction d’une limite
Certaines approches utilisent une fraction de la LOD ou de la LOQ.
Cette convention doit être expliquée et adaptée à l’objectif.
Les lignes ND peuvent influencer un total calculé
Lorsqu’un cannabinoïde est rapporté ND, sa concentration réelle peut être comprise entre zéro et une valeur inférieure à la LOD.
Le total présenté dépend alors de la convention appliquée par le laboratoire aux valeurs non détectées.
Deux laboratoires peuvent donc produire des totaux légèrement différents même avec des profils proches, notamment si leurs limites et leurs règles de calcul diffèrent.
Qu’est-ce que l’incertitude de mesure ?
Elle exprime la dispersion raisonnablement attribuable au résultat dans les conditions définies de la mesure.
Elle ne signifie pas que le laboratoire s’est trompé. Elle décrit le fait qu’une mesure réelle possède toujours une marge liée à la méthode, aux étalons, à la préparation et aux autres sources de variation.
Préparation
Pesée, volume, dilution, extraction et homogénéisation contribuent à la variabilité.
Étalons et références
Les valeurs de référence possèdent elles-mêmes une incertitude et des conditions d’utilisation.
Réponse instrumentale
Le signal peut varier légèrement entre plusieurs injections ou séries.
Effets de matrice
Les autres constituants de l’échantillon peuvent influencer la récupération ou la détection.
Conditions opératoires
Des variations maîtrisées de température, de temps ou de manipulation peuvent contribuer au résultat.
Répétabilité
Des mesures répétées du même matériau ne produisent pas toujours exactement le même chiffre.
Résultat : 100 mg/g ± 8 mg/g
Le résultat central rapporté est de 100 mg/g.
L’incertitude élargie indiquée dans cet exemple est de 8 mg/g.
L’intervalle associé s’étend donc de 92 à 108 mg/g, selon le niveau de couverture et les conditions précisés par le laboratoire.
Cela ne signifie pas que toutes les valeurs de cet intervalle sont également probables ni que le résultat peut être choisi librement à l’intérieur de cette plage.
Incertitude absolue ou relative : quelle différence ?
Exprimée dans la même unité que le résultat
Exemple : 100 mg/g ± 8 mg/g.
La marge peut être directement ajoutée et soustraite au résultat.
Exprimée en pourcentage du résultat
Exemple : 100 mg/g avec une incertitude de 8 %.
Dans ce cas précis, 8 % de 100 mg/g correspondent à 8 mg/g.
Convertir une incertitude relative en valeur absolue
Valeur absolue = résultat × incertitude relative.
Exemple : résultat de 80 mg/g avec une incertitude relative de 10 %.
80 × 0,10 = 8 mg/g. Le résultat peut alors être présenté comme 80 mg/g ± 8 mg/g, selon les conventions du rapport.
Que signifient « incertitude standard » et « incertitude élargie » ?
Ces deux expressions ne doivent pas être confondues, car elles ne représentent pas nécessairement la même largeur d’intervalle.
Incertitude standard
Elle représente une incertitude exprimée sous la forme d’un écart-type ou d’une grandeur équivalente.
Elle peut être utilisée comme base pour calculer une incertitude élargie.
Incertitude élargie
Elle est obtenue en multipliant l’incertitude standard par un facteur de couverture.
Le rapport doit préciser le facteur ou le niveau de couverture utilisé lorsqu’il est pertinent.
Elle indique généralement que l’incertitude élargie a été obtenue à partir d’une incertitude standard multipliée par un facteur de couverture égal à 2.
Dans de nombreuses situations, cette présentation est associée à un niveau de couverture proche de 95 %, sous certaines hypothèses.
Le niveau réel dépend cependant du modèle, de la distribution et des informations précisées par le laboratoire.
Comment interpréter un résultat proche d’une limite ?
Lorsque le résultat se situe loin du seuil, la conclusion est généralement plus simple.
Lorsqu’il se situe très près de la limite, l’incertitude, l’arrondi et la règle de décision peuvent modifier la conclusion de conformité.
Résultat nettement inférieur
L’intervalle associé reste entièrement sous la limite considérée.
La conclusion est généralement plus robuste.
Résultat proche
L’intervalle d’incertitude peut recouvrir la valeur limite.
La règle de décision devient alors essentielle.
Résultat nettement supérieur
L’intervalle associé reste entièrement au-dessus de la limite.
La conclusion de dépassement est généralement plus solide.
Limite fixée à 0,30 % — résultat de 0,29 % ± 0,03 %
Le résultat central est inférieur à la limite : 0,29 % contre 0,30 %.
L’intervalle associé à l’incertitude s’étend toutefois approximativement de 0,26 % à 0,32 %.
Cet intervalle recouvre la limite de 0,30 %. Le résultat central seul ne suffit donc pas à expliquer la conclusion de conformité.
Il faut connaître la règle de décision appliquée et la manière dont l’incertitude a été prise en compte.
0,29 % est inférieur à 0,30 %, donc le produit est conforme
Cette conclusion ignore l’incertitude, l’arrondi et la règle de décision.
Elle peut être trop simpliste lorsque la valeur se situe juste sous le seuil.
Le résultat doit être évalué selon une règle définie
Le laboratoire ou l’autorité peut appliquer une règle précisant comment traiter l’incertitude.
Cette règle doit idéalement être connue avant l’émission de la conclusion.
Qu’est-ce qu’une règle de décision ?
C’est la règle utilisée pour déterminer si un résultat respecte ou dépasse une exigence, notamment lorsque l’incertitude est prise en compte.
Identifier la limite
Le seuil doit provenir d’un référentiel, d’une spécification ou d’une exigence identifiable.
Définir le traitement de l’incertitude
La règle précise si l’incertitude est utilisée, ignorée ou intégrée avec une marge de sécurité.
Répartir le risque
Une décision peut exposer le fournisseur ou le consommateur à un risque d’acceptation ou de rejet incorrect.
Une bande de garde peut être utilisée autour du seuil
Elle consiste à déplacer la limite d’acceptation afin de réduire le risque de déclarer conforme un résultat dont la valeur réelle pourrait dépasser le seuil.
Cette approche peut rendre la décision plus prudente, mais elle doit être définie dans la règle de décision.
La mention « Pass » ne permet pas à elle seule de savoir si une bande de garde a été appliquée.
L’arrondi peut-il changer la lecture d’un résultat ?
Oui, surtout lorsque la valeur se situe à proximité immédiate d’une limite.
Valeur avant arrondi
Elle se situe légèrement sous 0,30 % lorsqu’elle est conservée avec trois décimales.
Valeur après arrondi
Elle apparaît exactement égale au seuil lorsqu’elle est arrondie à deux décimales.
La règle doit être définie par la méthode, le référentiel ou la procédure de décision.
Changer le nombre de décimales pour faire apparaître une conformité ou un dépassement crée une conclusion biaisée.
Les calculs doivent idéalement conserver davantage de chiffres que le résultat finalement rapporté.
Faut-il refaire une analyse lorsqu’un résultat est proche du seuil ?
Une répétition peut apporter des informations supplémentaires, mais elle ne doit pas servir à choisir uniquement le résultat le plus favorable.
Répéter la même prise d’essai
Cette répétition renseigne surtout sur la variabilité de la préparation et de la mesure.
Elle ne corrige pas un échantillon initial non représentatif du lot.
Réaliser un nouveau prélèvement
Cette démarche peut mieux évaluer la variation au sein du lot.
Le plan, le nombre de prélèvements et la règle de décision doivent être définis.
Les critères de répétition et la manière de combiner les résultats doivent être définis avant de connaître les nouvelles valeurs.
Écarter sans justification les résultats défavorables peut masquer une variation réelle du produit ou du lot.
Une procédure transparente doit préciser si les résultats sont moyennés, conservés séparément ou soumis à une règle particulière.
Où trouver la LOD, la LOQ et l’incertitude ?
Dans le tableau
Les limites peuvent apparaître dans des colonnes placées à côté de chaque substance.
Dans les notes de bas de page
Les symboles ND, NQ ou les astérisques peuvent être définis sous le tableau.
Dans une annexe
Certaines informations techniques sont regroupées à la fin du document.
Dans la référence de méthode
Les performances peuvent être liées à une méthode interne ou à une fiche technique distincte.
À côté du résultat
L’incertitude peut être indiquée directement sous la forme « résultat ± U ».
Sur demande
Certaines informations peuvent être disponibles auprès du laboratoire sans apparaître sur chaque rapport.
Delta-9-THC : ND
Sans LOD, le lecteur ne connaît pas la sensibilité réelle de la méthode.
Il ne peut pas comparer sérieusement cette mention à celle d’un autre rapport.
Delta-9-THC : ND — LOD 0,01 %
Le niveau de détection est clairement identifié.
La portée du résultat peut être comparée à une exigence ou à une autre méthode.
Les quinze questions à poser
- La LOD est-elle indiquée pour chaque substance importante ?
- La LOQ est-elle également disponible ?
- Les limites utilisent-elles la même unité que le résultat ?
- Les limites sont-elles adaptées à la matrice analysée ?
- La méthode est-elle suffisamment sensible par rapport au seuil ?
- La mention ND est-elle clairement définie ?
- Le rapport distingue-t-il ND et NQ ?
- Le terme « trace » possède-t-il une définition ?
- Les valeurs sous la LOQ sont-elles signalées comme estimatives ?
- Un zéro affiché correspond-il à une vraie valeur nulle ou à une convention ?
- L’incertitude est-elle absolue ou relative ?
- Le facteur de couverture est-il précisé ?
- Le résultat se situe-t-il près d’une limite ?
- La règle de décision est-elle connue ?
- La règle d’arrondi peut-elle influencer la conclusion ?
- La mention ND est présentée comme une garantie de zéro absolu.
- Aucune LOD ou LOQ ne peut être retrouvée.
- Deux laboratoires sont comparés sans tenir compte de leurs limites différentes.
- Une méthode possède une LOQ supérieure au seuil à contrôler.
- Les résultats sous la LOQ sont présentés comme des quantifications ordinaires.
- Le terme « trace » n’est jamais défini.
- Les valeurs ND sont remplacées par zéro sans explication dans les calculs.
- L’incertitude est indiquée sans unité ni précision sur sa nature.
- Un intervalle recouvrant le seuil est présenté comme une conformité évidente.
- La règle de décision n’est pas identifiable.
- Le résultat est fortement arrondi à proximité de la limite.
- Plusieurs analyses sont réalisées jusqu’à obtenir une valeur favorable, sans procédure définie.
« Non détecté » décrit la capacité d’une méthode, pas une preuve d’absence absolue dans la matière.
Nous considérons qu’une mention ND ne devrait jamais être publiée sans permettre au lecteur de connaître la limite de détection correspondante.
Les résultats proches d’une limite doivent également être présentés avec leur unité, leur incertitude, leur niveau d’arrondi et la règle de décision appliquée.
Un simple voyant vert ne remplace pas les informations nécessaires pour comprendre la portée réelle de la conclusion.
Nous apprendrons à lire les analyses de contaminants : pesticides, métaux, microorganismes, levures et moisissures, mycotoxines, solvants résiduels et limites des panels utilisés.
Comment lire les analyses de contaminants ?
Un profil cannabinoïde ne renseigne pas sur les pesticides, les métaux, les microorganismes, les mycotoxines ou les solvants résiduels.
Chacune de ces familles nécessite des essais spécifiques, un panel défini, des limites analytiques adaptées et des critères d’interprétation clairement identifiés.
Un rapport ne démontre l’absence que des contaminants réellement recherchés, avec une méthode suffisamment sensible et dans la matrice concernée . Une ligne absente du tableau n’est pas une ligne conforme.
Une analyse de contaminants est toujours ciblée
Le laboratoire ne recherche pas automatiquement toutes les substances indésirables possibles.
Il applique un ou plusieurs panels comprenant une liste définie de substances, de microorganismes ou de familles de contaminants.
Les éléments recherchés
Chaque pesticide, métal, microorganisme, mycotoxine ou solvant doit être identifiable.
Les limites analytiques
La LOD et la LOQ doivent être suffisamment basses pour l’objectif du contrôle.
Les unités
mg/kg, µg/kg, ppm, ppb, UFC/g ou présence dans une quantité définie.
Les critères appliqués
Le seuil peut provenir d’un référentiel, d’une spécification ou d’une exigence particulière.
La matrice
La méthode doit être adaptée à la forme réellement analysée.
Le statut du résultat
Quantifié, non détecté, inférieur à une limite, conforme ou non conforme.
« Sans contaminants » après une seule famille d’essais
Un rapport peut montrer l’absence de certains métaux sans comporter la moindre recherche de pesticides ou de microorganismes.
La conclusion dépasse alors le périmètre réel des analyses réalisées.
Chaque famille contrôlée est clairement identifiée
Le document distingue les cannabinoïdes, les pesticides, les métaux, la microbiologie, les mycotoxines et les solvants.
Les essais non réalisés ne sont pas présentés comme des résultats négatifs.
Comment lire un panel de pesticides ?
Un panel de pesticides doit indiquer les substances recherchées, leurs résultats, leurs unités et leurs limites analytiques.
La mention générale « pesticides : conforme » apporte peu d’informations si la liste du panel n’est pas disponible.
Le nom de chaque substance
Le tableau doit permettre de savoir précisément quels résidus ont été recherchés.
La limite de quantification
Elle doit être suffisamment basse par rapport au critère utilisé.
Le résultat individuel
Quantité mesurée, ND, inférieur à la LOQ ou autre statut clairement défini.
La limite appliquée
Le seuil doit être relié à un référentiel ou à une spécification.
La conclusion
Une mention Pass doit pouvoir être vérifiée à partir du résultat et du seuil.
L’adéquation de la matrice
Une méthode multi-résidus doit être validée ou vérifiée pour la matière concernée.
Un panel plus long n’est pas automatiquement meilleur
Rechercher davantage de substances peut élargir le périmètre du contrôle.
Mais chaque analyte doit encore être mesuré avec une sensibilité et des performances adaptées.
Un panel de deux cents substances avec des LOQ trop élevées peut être moins pertinent qu’un panel mieux ciblé et suffisamment sensible.
Résultat pesticide : ND — LOQ à 0,05 mg/kg
La substance n’a pas été quantifiée au-dessus de 0,05 mg/kg.
Si le seuil de décision est de 0,10 mg/kg, la méthode peut quantifier sous cette limite.
Si le seuil était de 0,01 mg/kg, la LOQ de 0,05 mg/kg serait trop élevée pour vérifier correctement cette exigence.
La mention ND doit donc toujours être interprétée en comparant la limite analytique au seuil concerné.
Une méthode multi-résidus ne couvre pas automatiquement toutes les substances existantes.
Certaines molécules peuvent nécessiter une préparation ou une technique distincte.
La conclusion doit donc rester limitée aux substances figurant réellement dans le panel.
Comment lire une analyse de métaux ?
Les rapports recherchent souvent plusieurs éléments susceptibles de provenir du sol, de l’environnement, des équipements ou des matières premières.
La liste exacte et les limites appliquées dépendent du produit et du référentiel utilisé.
Plomb
Élément recherché dans de nombreux panels de contaminants métalliques.
Cadmium
Peut être absorbé depuis le sol par certaines matières végétales.
Mercure
Sa présence peut être évaluée avec une méthode adaptée aux faibles concentrations.
Arsenic
Le rapport peut mesurer l’arsenic total sans distinguer toutes ses formes chimiques.
Le laboratoire mesure l’élément dans son ensemble
Le résultat regroupe différentes formes chimiques possibles d’un même élément.
Il ne permet pas toujours de connaître leur répartition individuelle.
La méthode distingue certaines formes chimiques
Cette analyse nécessite une procédure spécifique et ne doit pas être supposée à partir d’un résultat total.
Le nom précis de la forme recherchée doit apparaître dans le rapport.
Métaux : ne pas confondre mg/kg et µg/kg
1 mg/kg correspond à 1 000 µg/kg.
Un résultat de 0,05 mg/kg correspond donc à 50 µg/kg.
Une erreur de préfixe peut multiplier ou diviser la valeur apparente par mille.
Le seuil et le résultat doivent toujours être comparés dans la même unité.
Comment lire une analyse microbiologique ?
Les essais microbiologiques peuvent mesurer une population globale, rechercher certaines levures ou moisissures ou détecter des microorganismes ciblés.
Un dénombrement général et une recherche de pathogène ne répondent pas à la même question.
Flore aérobie totale
Dénombrement global de microorganismes capables de se développer dans les conditions de l’essai.
Levures et moisissures
Dénombrement d’organismes cultivables selon la méthode et les conditions utilisées.
Recherche ciblée
Certaines bactéries peuvent être recherchées séparément selon le produit et le référentiel.
Présence ou absence
Un résultat peut être exprimé comme absence dans une quantité donnée.
Unités formant colonie
Le résultat peut être présenté en UFC/g ou UFC/ml selon la matrice.
Limite de dénombrement
Une valeur inférieure à la limite ne signifie pas absence absolue de microorganismes.
Une UFC ne correspond pas forcément à une seule cellule
Une colonie peut provenir d’une cellule unique, d’un amas ou d’un groupe de cellules restées associées.
Le résultat constitue donc un dénombrement d’unités cultivables dans les conditions de la méthode.
Il ne représente pas automatiquement tous les microorganismes présents dans l’échantillon.
Exemple : 500 UFC/g
La méthode estime une quantité de microorganismes cultivables par gramme de produit.
Le résultat est comparé à une limite chiffrée.
Exemple : absence dans 25 g
La méthode cherche à détecter un microorganisme précis dans une quantité définie.
Cette conclusion ne se convertit pas directement en un nombre d’UFC/g.
Température, durée d’incubation, milieu de culture et disponibilité de l’oxygène influencent les colonies obtenues.
Un microorganisme vivant mais incapable de se développer dans ces conditions peut ne pas être compté.
Le résultat doit donc rester lié à la méthode microbiologique utilisée.
Levures, moisissures et mycotoxines : quelle différence ?
Un dénombrement de moisissures ne constitue pas une analyse de mycotoxines.
Les deux essais peuvent être complémentaires, mais ils recherchent des éléments différents.
Organismes cultivables
L’analyse évalue des organismes capables de se développer dans les conditions microbiologiques prévues.
Elle ne mesure pas directement les toxines qu’une moisissure aurait pu produire.
Molécules produites par certaines moisissures
L’analyse recherche et quantifie des composés chimiques ciblés.
Elle nécessite une méthode distincte du simple dénombrement microbiologique.
Comment lire un panel de mycotoxines ?
Le rapport doit préciser les mycotoxines recherchées, les résultats individuels, les unités et les limites appliquées.
Aflatoxine B1
Peut être rapportée individuellement dans certains panels.
Aflatoxines totales
Somme définie de plusieurs aflatoxines selon la méthode ou le référentiel.
Ochratoxine A
Peut faire l’objet d’une ligne et d’une limite distinctes.
Des toxines peuvent subsister alors que les organismes producteurs ne sont plus cultivables ou sont présents en faible quantité.
Inversement, la présence de moisissures ne démontre pas automatiquement la production de toutes les mycotoxines possibles.
Les deux familles de résultats doivent donc être lues séparément.
Comment lire une analyse de solvants résiduels ?
Cette analyse recherche des solvants susceptibles de rester dans une matière ou une formulation après une opération d’extraction, de purification ou de fabrication.
Elle ne doit pas être confondue avec un profil de terpènes ou avec une mesure générale des composés volatils.
Liste des solvants
Chaque composé recherché doit apparaître dans le tableau.
Unité de concentration
Les résultats sont souvent exprimés en mg/kg ou en ppm sur une base définie.
Sensibilité
La LOQ doit être adaptée aux limites utilisées pour chaque solvant.
Technique analytique
Une méthode dédiée aux composés volatils peut être employée.
Procédé de fabrication
Le panel doit tenir compte des solvants réellement utilisés ou plausibles.
Produit fini
Une analyse de l’extrait avant formulation ne décrit pas automatiquement le produit terminé.
L’analyse doit rester cohérente avec les substances utilisées
Rechercher un grand nombre de solvants peut élargir le contrôle, mais le procédé de fabrication reste une information essentielle.
Les solvants employés pendant l’extraction, le nettoyage ou la formulation doivent être pris en compte.
Une déclaration « sans solvant » ne doit pas reposer uniquement sur l’absence d’une petite sélection de composés dans un panel incomplet.
Résidu d’une substance utilisée pendant le procédé
Il est recherché dans le cadre d’un panel de contaminants volatils.
Sa présence est comparée à une limite définie.
Constituant naturellement présent ou ajouté
Il peut apparaître dans un profil aromatique sans constituer automatiquement un contaminant.
La méthode et l’objectif du contrôle doivent être distingués.
Quelles autres informations peut-on rencontrer ?
Certains rapports comportent d’autres paramètres utiles pour comprendre l’état ou la stabilité d’une matière.
Humidité
Mesure la proportion d’eau selon la méthode utilisée.
Activité de l’eau
Apporte une information différente de la simple teneur totale en eau.
Matières étrangères
Certaines méthodes peuvent évaluer des éléments visibles ou physiques indésirables.
Profil aromatique
Il décrit certains composés volatils, mais ne remplace pas un panel de solvants.
Stabilité
Peut suivre l’évolution d’un produit dans le temps.
Paramètres physiques
Masse volumique, viscosité ou autre caractéristique selon le produit.
Quantité totale d’eau dans l’échantillon
Elle influence la masse, les concentrations sur matière brute et certaines propriétés du produit.
Elle ne décrit pas seule la disponibilité de l’eau pour les microorganismes.
Eau disponible dans le système
Elle apporte une information liée au potentiel de certaines évolutions microbiologiques.
Deux matières avec une humidité proche peuvent présenter une activité de l’eau différente.
Que signifie une mention globale « contaminants : Pass » ?
Elle signifie normalement que les résultats du panel satisfont aux critères appliqués par le laboratoire.
Elle ne démontre pas l’absence de toutes les substances indésirables possibles.
Qu’a-t-on recherché ?
Vérifiez la liste complète des substances et microorganismes.
Sur quelle matrice ?
Matière première, extrait, formulation ou produit fini.
Avec quelles limites ?
Comparez LOD, LOQ et seuils de décision.
Selon quel référentiel ?
Le critère doit être identifiable et adapté au produit.
Quelle règle de décision ?
La prise en compte de l’incertitude peut influencer la conclusion.
Pour quel lot ?
La conclusion ne couvre que l’échantillon et le lot reliés au rapport.
| Famille | Résultat fréquent | Unité possible | Question prioritaire |
|---|---|---|---|
| Pesticides | ND, < LOQ ou valeur chiffrée | mg/kg, µg/kg, ppm | Quelles substances figurent dans le panel ? |
| Métaux | Valeur individuelle par élément | mg/kg ou µg/kg | Le résultat est-il total ou spécifique à une forme ? |
| Flore totale | Dénombrement | UFC/g ou UFC/ml | Quelles conditions de culture ont été utilisées ? |
| Pathogène ciblé | Présence ou absence | Dans 1 g, 10 g, 25 g ou autre quantité | Quelle quantité d’échantillon a été examinée ? |
| Mycotoxines | ND, < LOQ ou valeur chiffrée | µg/kg ou mg/kg | Quelles toxines ont été recherchées ? |
| Solvants résiduels | ND, < LOQ ou valeur chiffrée | mg/kg ou ppm | Le panel couvre-t-il les solvants du procédé ? |
Une analyse de matière première suffit-elle pour le produit fini ?
Elle apporte une information utile sur l’ingrédient ou la matière reçue.
Mais la transformation, le mélange, le stockage et le conditionnement peuvent introduire ou modifier certains risques.
Contrôle de la matière
Aide à qualifier le fournisseur et le lot entrant.
Ne décrit pas automatiquement toutes les étapes ultérieures.
Contrôle du produit terminé
Prend en compte la formulation réellement conditionnée.
Il reste dépendant de la représentativité de l’échantillon prélevé.
Stockage inadapté, humidité, rupture d’emballage ou contamination pendant le conditionnement peuvent modifier l’état du produit.
Un rapport ancien ne garantit donc pas que toutes les unités sont restées identiques jusqu’à leur utilisation.
La qualité du stockage et de la traçabilité reste complémentaire aux analyses de laboratoire.
Comment savoir si le panel est pertinent ?
Le panel doit tenir compte de la matière, du procédé, de l’origine des ingrédients et de l’usage prévu du produit.
Origine de la matière
Sol, eau, culture et environnement peuvent orienter certains contrôles.
Procédé de transformation
Extraction, purification et nettoyage peuvent justifier des analyses spécifiques.
Formulation finale
Chaque ingrédient peut introduire ses propres paramètres de contrôle.
Conditions de stockage
Humidité, température et durée peuvent modifier les risques microbiologiques.
Usage prévu
Les exigences pertinentes peuvent varier selon la catégorie du produit.
Historique fournisseur
Les résultats antérieurs et les anomalies peuvent guider la fréquence des contrôles.
Le bon panel dépend du produit et de son contexte
Un contrôle pertinent pour une matière végétale ne couvre pas automatiquement tous les risques d’une huile, d’un extrait ou d’une autre formulation.
Les méthodes et les limites doivent être adaptées à la matrice et à l’objectif.
Le nombre de pages du certificat ne remplace pas une sélection raisonnée des essais.
Comment contrôler rapidement la partie contaminants ?
Repérer les familles
Pesticides, métaux, microbiologie, mycotoxines et solvants.
Ouvrir les listes
Vérifiez chaque substance ou microorganisme recherché.
Lire les limites
Comparez LOD et LOQ aux seuils appliqués.
Contrôler les unités
mg/kg, µg/kg, ppm, UFC/g ou présence dans une quantité.
Vérifier le référentiel
Identifiez l’origine des critères de conformité.
Revenir au lot
Confirmez la correspondance entre le rapport et le produit.
Les dix-huit questions à poser
- Les différentes familles de contaminants sont-elles séparées ?
- La liste complète des pesticides recherchés est-elle disponible ?
- Chaque pesticide possède-t-il une LOD ou une LOQ adaptée ?
- Les métaux recherchés sont-ils clairement nommés ?
- Le résultat concerne-t-il l’élément total ou une forme spécifique ?
- Les unités du résultat et du seuil sont-elles identiques ?
- Les essais microbiologiques sont-ils des dénombrements ou des recherches de présence ?
- La quantité d’échantillon utilisée pour une recherche ciblée est-elle indiquée ?
- La limite de dénombrement est-elle disponible ?
- Les levures et moisissures sont-elles distinguées des mycotoxines ?
- Les mycotoxines individuelles et leurs totaux sont-ils définis ?
- Le panel de solvants correspond-il au procédé de fabrication ?
- Les solvants non recherchés sont-ils présentés comme absents ?
- L’analyse porte-t-elle sur la matière première ou sur le produit fini ?
- Le panel est-il adapté à la matrice ?
- Le référentiel de conformité est-il identifiable ?
- La règle de décision tient-elle compte de l’incertitude ?
- Le rapport complet permet-il de retrouver les résultats chiffrés derrière chaque mention Pass ?
- Le document affirme « sans contaminants » sans présenter les panels utilisés.
- Seul un profil cannabinoïde est disponible.
- Les pesticides sont résumés par une seule ligne « Pass ».
- La liste des substances recherchées est absente.
- Les LOQ sont supérieures aux limites à vérifier.
- Les unités changent entre le résultat et le seuil.
- Un métal total est présenté comme une forme chimique précise.
- Un résultat microbiologique est affiché sans unité.
- Une absence dans 25 g est convertie en UFC/g.
- Le dénombrement des moisissures est présenté comme une analyse de mycotoxines.
- Un panel de solvants ne correspond pas au procédé utilisé.
- Une analyse de matière première est présentée comme celle du produit fini.
- Le certificat d’un ancien lot est réutilisé pour une fabrication différente.
- Les pages détaillées du rapport ne sont pas accessibles.
Un rapport ne prouve pas l’absence de tous les contaminants : il documente uniquement ceux qui ont été recherchés avec les méthodes et les limites indiquées.
Nous considérons qu’une conclusion générale ne doit jamais dépasser la liste réelle des essais effectués.
Les pesticides, les métaux, la microbiologie, les mycotoxines et les solvants doivent être présentés comme des contrôles distincts.
La transparence consiste autant à montrer ce qui a été analysé qu’à reconnaître clairement ce qui ne l’a pas été.
Nous apprendrons à interpréter les mentions « conforme », « Pass » et « Fail », à identifier l’origine des seuils et à comprendre les règles de décision appliquées aux résultats proches d’une limite.
Comment interpréter « conforme », « Pass » ou « Fail » ?
Une mention de conformité ne prend son sens que si l’on connaît le résultat chiffré, la limite utilisée et la règle appliquée pour comparer les deux.
Un voyant vert ne constitue donc pas une conclusion autonome. Il résume une décision qui doit rester vérifiable à partir du rapport complet.
Une conclusion « conforme » doit permettre d’identifier la valeur mesurée, le seuil de comparaison, l’origine de ce seuil et la règle de décision .
Les trois niveaux à ne pas confondre
Le résultat analytique
Il s’agit de la valeur produite par la méthode de laboratoire.
Elle doit rester associée à son unité, à son incertitude et à l’échantillon analysé.
Le critère ou seuil
C’est la valeur à laquelle le résultat est comparé.
Elle peut provenir d’un référentiel, d’un cahier des charges ou d’une spécification interne.
La règle de décision
Elle définit comment le résultat, l’incertitude et le seuil sont combinés pour conclure.
Elle transforme une mesure en décision de conformité.
« Conforme » signifie conforme à quoi ?
La conformité n’est jamais générale. Elle concerne un critère précis appliqué à un résultat déterminé.
Une exigence réglementaire
Le résultat peut être comparé à une limite définie dans un texte applicable au produit.
Le rapport doit identifier précisément le référentiel utilisé.
Un cahier des charges
Un client, un distributeur ou une organisation peut fixer ses propres limites d’acceptation.
Elles peuvent être plus strictes que d’autres critères externes.
Une spécification interne
Le fabricant peut définir une plage de concentration ou un niveau de qualité attendu.
Cette conformité ne doit pas être présentée comme une conformité réglementaire générale.
Une valeur annoncée
Le laboratoire peut comparer un dosage à une concentration ou à une quantité déclarée.
La tolérance appliquée doit alors être identifiable.
Un produit peut respecter les spécifications définies par une entreprise sans avoir été comparé à toutes les exigences possibles.
La mention « conforme » doit donc rester accompagnée du nom ou de la référence du critère appliqué.
Sans cette information, le lecteur ne peut pas savoir ce qui a réellement été vérifié.
Que signifient « Pass » et « Fail » ?
Le résultat satisfait au critère appliqué
Cette conclusion dépend du seuil, de la règle de décision et de la manière dont l’incertitude est traitée.
Elle ne concerne que le paramètre, l’échantillon et le lot identifiés.
Le résultat ne satisfait pas au critère appliqué
Le résultat dépasse une limite, reste en dehors d’une plage ou ne respecte pas une exigence définie.
Le motif précis doit pouvoir être retrouvé dans les résultats chiffrés.
Un « Pass » général peut masquer plusieurs décisions individuelles
Un rapport peut contenir plusieurs dizaines de résultats évalués séparément.
La conclusion globale peut signifier que toutes les substances du panel satisfont aux critères appliqués.
Il faut néanmoins consulter les lignes individuelles pour vérifier les valeurs proches des limites et les substances réellement incluses.
Résultat : 0,20 mg/kg — limite : 0,50 mg/kg
Le résultat est inférieur à la limite.
Avec une règle simple consistant à comparer directement la valeur mesurée au seuil, le résultat serait déclaré conforme.
La conclusion dépend toutefois du référentiel et de la règle réellement définis pour cet essai.
Tous les critères ne sont pas de simples limites maximales
Certains paramètres doivent rester sous une limite maximale, tandis que d’autres doivent se situer dans une plage définie.
Limite maximale
Le résultat ne doit pas dépasser une valeur définie.
Cette situation est fréquente pour certains contaminants.
Limite minimale
Le résultat doit atteindre au moins une valeur définie.
Elle peut être utilisée pour une spécification de concentration.
Intervalle d’acceptation
Le résultat doit rester entre une limite basse et une limite haute.
Une valeur trop faible ou trop élevée peut être déclarée non conforme.
Concentration attendue : entre 95 et 105 mg/ml
Un résultat de 100 mg/ml se situe dans l’intervalle.
Un résultat de 90 mg/ml se situe sous la limite basse.
Un résultat de 110 mg/ml dépasse la limite haute.
L’incertitude et la règle de décision peuvent toutefois modifier l’évaluation des résultats proches de 95 ou 105 mg/ml.
Qu’est-ce qu’une règle de décision simple ?
Elle consiste à comparer directement le résultat central à la limite, sans ajouter de marge de sécurité.
Résultat inférieur ou égal au seuil
Le résultat est déclaré conforme si la règle accepte l’égalité.
Le traitement exact de l’égalité doit être défini.
Résultat supérieur au seuil
Le résultat est déclaré non conforme selon cette règle directe.
L’incertitude n’est pas utilisée pour déplacer la limite d’acceptation.
Même si la règle compare uniquement le résultat central au seuil, la mesure conserve une incertitude.
Cette règle répartit simplement le risque de décision d’une certaine manière.
Elle doit être connue et acceptée par les parties concernées.
Qu’est-ce qu’une bande de garde ?
Une bande de garde consiste à déplacer la limite d’acceptation par rapport à la limite de spécification.
Cette marge peut être utilisée pour réduire le risque d’accepter un résultat dont la valeur réelle pourrait dépasser la limite.
Valeur maximale autorisée par le référentiel
Elle définit la frontière entre la zone attendue et la zone hors spécification.
Elle ne change pas simplement parce que le laboratoire utilise une marge.
Valeur utilisée pour déclarer le résultat conforme
Elle peut être placée légèrement avant la limite de spécification.
La différence entre les deux constitue la bande de garde.
Limite de spécification : 0,30 % — limite d’acceptation : 0,27 %
La zone comprise entre 0,27 % et 0,30 % constitue ici une bande de garde de 0,03 point.
Selon cette règle, un résultat de 0,26 % pourrait être accepté.
Un résultat de 0,28 % resterait sous la limite de spécification, mais ne satisferait pas à la limite d’acceptation choisie.
La règle doit être annoncée avant l’interprétation du résultat.
Quelle différence entre fausse acceptation et faux rejet ?
Fausse acceptation
Le résultat est déclaré conforme, alors que la valeur réelle pourrait dépasser le critère.
Une règle plus prudente peut chercher à réduire ce risque.
Faux rejet
Le résultat est déclaré non conforme, alors que la valeur réelle pourrait respecter le critère.
Une bande de garde plus large peut augmenter ce risque.
Réduire un risque peut en augmenter un autre
Une règle très prudente protège davantage contre une fausse acceptation.
Elle peut cependant conduire à rejeter davantage de résultats proches de la limite.
La règle de décision doit donc refléter l’objectif du contrôle et les conséquences d’une mauvaise décision.
Comment l’incertitude peut-elle modifier la conclusion ?
Lorsque l’intervalle associé au résultat recouvre la limite, plusieurs règles de décision peuvent conduire à des conclusions différentes.
Résultat central uniquement
La valeur mesurée est directement comparée au seuil.
L’incertitude n’est pas utilisée pour déplacer la décision.
Intervalle entièrement conforme
Le résultat n’est accepté que si l’ensemble de l’intervalle reste dans la zone conforme.
Cette règle est plus prudente contre une fausse acceptation.
Zone d’incertitude
Une conclusion conditionnelle ou indéterminée peut être utilisée lorsque l’intervalle recouvre le seuil.
Cette possibilité dépend du référentiel applicable.
| Résultat | Incertitude | Limite | Situation |
|---|---|---|---|
| 0,20 % | ± 0,02 % | 0,30 % | Intervalle entièrement sous la limite |
| 0,29 % | ± 0,03 % | 0,30 % | Intervalle recouvrant la limite |
| 0,35 % | ± 0,02 % | 0,30 % | Intervalle entièrement au-dessus |
Lorsqu’un résultat se situe très près d’une limite, une réponse binaire peut masquer une zone réelle d’incertitude.
Selon la procédure applicable, le rapport peut signaler que la conformité dépend de la règle de décision retenue.
Cette nuance est plus informative qu’un voyant vert ou rouge présenté sans explication.
Comment traiter un résultat égal au seuil ?
La réponse dépend du symbole utilisé dans le critère : inférieur, inférieur ou égal, supérieur ou intervalle fermé.
Strictement inférieur
Une valeur exactement égale à la limite ne satisfait pas à un critère strict « inférieur à ».
Inférieur ou égal
Une valeur égale à la limite peut être acceptée selon le critère.
Valeur arrondie
Une valeur affichée au seuil peut provenir d’un résultat initial légèrement inférieur ou supérieur.
0,297 % et 0,304 % peuvent tous deux apparaître comme 0,30 %
Le premier résultat est inférieur à 0,30 % avant arrondi.
Le second est supérieur à 0,30 % avant arrondi.
Une conclusion sérieuse doit donc appliquer une règle d’arrondi définie et conserver les données nécessaires au calcul de la décision.
Peut-on moyenner plusieurs résultats avant de conclure ?
Seulement si la procédure le prévoit et si les résultats correspondent à une même stratégie d’analyse.
Répétitions analytiques
Plusieurs mesures du même échantillon peuvent être combinées selon la méthode.
Elles renseignent surtout sur la variation analytique.
Plusieurs unités du lot
Une moyenne peut masquer une unité individuelle dépassant la limite.
La règle doit préciser si chaque unité ou la moyenne doit respecter le critère.
Trois unités : 0,20 %, 0,25 % et 0,40 %
La moyenne est d’environ 0,283 %.
Elle est inférieure à une limite hypothétique de 0,30 %.
Pourtant, l’une des unités présente une valeur de 0,40 %.
La conformité dépend donc de la règle : moyenne du lot ou conformité de chaque unité.
Une réanalyse annule-t-elle le premier résultat ?
Pas automatiquement. La procédure doit préciser les conditions de répétition, le prélèvement et le traitement des différents résultats.
Erreur analytique démontrée
Un contrôle défaillant, une erreur de préparation ou un problème d’instrument peut justifier l’invalidation.
Répétition du même échantillon
Elle peut confirmer ou préciser le résultat initial.
Elle n’évalue pas nécessairement la variation du lot.
Nouveau prélèvement
Il peut produire une valeur différente si le lot est hétérogène.
La relation entre les résultats doit rester documentée.
Choisir uniquement le résultat favorable parmi plusieurs analyses masque la variabilité réelle.
Les critères de réanalyse et la manière de combiner ou d’interpréter les résultats doivent être définis à l’avance.
Le premier résultat ne doit pas disparaître sans justification technique documentée.
Le laboratoire décide-t-il toujours de la conformité ?
Non. Il peut fournir uniquement le résultat, ou appliquer une règle convenue avec le client.
Résultat sans conclusion
Le laboratoire rapporte la valeur et laisse au client l’interprétation réglementaire ou commerciale.
Conclusion selon une règle convenue
Le laboratoire applique un seuil et une règle identifiés avant l’analyse.
Décision finale du client
L’entreprise peut intégrer le résultat dans une évaluation plus large du produit ou du lot.
« Conforme selon la spécification fournie par le client »
Cette phrase signifie que le laboratoire a appliqué le critère transmis par son client.
Elle ne démontre pas automatiquement que le seuil provient d’un référentiel réglementaire.
La source de la spécification doit être vérifiée séparément.
Un même résultat peut-il être conforme à un référentiel et non conforme à un autre ?
Oui. Deux cahiers des charges peuvent utiliser des limites différentes.
Référentiel A
Limite fixée à 1,0 mg/kg.
Un résultat de 0,8 mg/kg peut être déclaré conforme.
Référentiel B
Limite fixée à 0,5 mg/kg.
Le même résultat de 0,8 mg/kg devient non conforme.
Le laboratoire peut avoir correctement comparé le résultat à la valeur qui lui a été transmise.
Si cette valeur ne correspond pas au produit, à la matrice ou au référentiel réellement applicable, la conclusion devient inadaptée.
La vérification du seuil est donc aussi importante que celle du résultat.
Un produit peut-il être conforme sur certains paramètres seulement ?
Oui. Chaque famille d’essais peut produire sa propre conclusion.
Profil cannabinoïde conforme
Les concentrations satisfont aux spécifications appliquées.
Pesticides conformes
Les substances du panel respectent les limites utilisées.
Microbiologie non conforme
Un dénombrement ou une recherche ciblée ne satisfait pas au critère.
Une ligne conforme signifie que le produit est entièrement conforme
Une conclusion sur les cannabinoïdes ne couvre pas automatiquement les contaminants ou la microbiologie.
Chaque famille doit être examinée séparément.
La portée de la conformité est clairement délimitée
Le rapport indique les paramètres effectivement contrôlés.
Les essais absents ne sont pas inclus dans la conclusion générale.
Comment vérifier une conclusion en cinq minutes ?
Identifier le paramètre
Quelle substance ou caractéristique est concernée ?
Lire le résultat
Relevez la valeur, l’unité et la base d’expression.
Repérer le seuil
Vérifiez sa valeur et son unité.
Identifier la source
Réglementation, cahier des charges ou spécification interne ?
Lire la règle de décision
Comment l’incertitude et l’arrondi sont-ils traités ?
Contrôler la portée
La conclusion concerne-t-elle une ligne, un panel ou tout le rapport ?
| Élément | Question | Information attendue | Risque si absente |
|---|---|---|---|
| Résultat | Quelle valeur a été mesurée ? | Valeur, unité et base | Conclusion impossible à vérifier |
| Seuil | À quelle limite compare-t-on le résultat ? | Valeur et unité | Pass ou Fail sans fondement visible |
| Référentiel | D’où vient la limite ? | Texte, cahier des charges ou spécification | Mauvais critère appliqué |
| Incertitude | Le résultat est-il proche du seuil ? | Valeur absolue ou relative | Décision trop catégorique |
| Règle de décision | Comment conclut-on ? | Comparaison directe ou bande de garde | Risque d’acceptation ou de rejet incompris |
| Portée | Que couvre la conclusion ? | Paramètre, panel, matrice et lot | Généralisation abusive |
Les dix-huit questions à poser
- Le résultat chiffré apparaît-il derrière la mention Pass ?
- Le seuil de comparaison est-il visible ?
- Le résultat et le seuil utilisent-ils la même unité ?
- Le critère est-il une limite maximale, minimale ou une plage ?
- L’égalité au seuil est-elle acceptée ?
- L’origine du seuil est-elle identifiable ?
- S’agit-il d’une exigence réglementaire, contractuelle ou interne ?
- Le référentiel correspond-il à la matrice et au produit analysés ?
- L’incertitude de mesure est-elle disponible ?
- Le résultat se situe-t-il près de la limite ?
- La règle de décision est-elle indiquée ?
- Une bande de garde est-elle appliquée ?
- La règle d’arrondi est-elle connue ?
- Une moyenne masque-t-elle une unité individuelle non conforme ?
- Une réanalyse a-t-elle été réalisée ?
- Le premier résultat a-t-il été conservé et expliqué ?
- La conclusion concerne-t-elle un paramètre, un panel ou tout le produit ?
- Le lot du rapport correspond-il au produit présenté ?
- Le rapport affiche uniquement Pass ou Fail sans valeur chiffrée.
- Aucun seuil n’est visible.
- L’origine du seuil n’est pas indiquée.
- Une spécification interne est présentée comme une exigence réglementaire générale.
- Le résultat et la limite utilisent des unités différentes.
- Une conclusion repose sur un résultat fortement arrondi.
- L’incertitude est ignorée alors que le résultat touche la limite.
- La règle de décision change après connaissance du résultat.
- Une bande de garde est utilisée sans être expliquée.
- Plusieurs analyses sont réalisées jusqu’à obtenir un Pass.
- Un résultat défavorable disparaît d’une version corrigée sans justification.
- Une moyenne conforme masque une unité individuelle supérieure au seuil.
- Une conformité sur les cannabinoïdes est étendue aux contaminants.
- Le certificat d’un lot ancien est utilisé pour conclure sur un lot différent.
Un voyant vert n’est pas une preuve autonome : il n’a de valeur que si le résultat, le seuil et la règle de décision peuvent être vérifiés.
Nous considérons qu’une conclusion de conformité doit toujours rester reliée au résultat chiffré et au référentiel utilisé.
Une mention Pass ne devrait jamais masquer l’incertitude, l’arrondi ou une valeur située très près de la limite.
La transparence consiste aussi à préciser lorsqu’une conformité concerne uniquement un panel limité ou une spécification interne.
Nous réunirons toutes les étapes dans une méthode de lecture en cinq minutes, une checklist complète, une FAQ, une conclusion et les sources de référence.
Comment lire un certificat d’analyse CBD en cinq minutes ?
La lecture d’un rapport devient beaucoup plus simple lorsqu’elle suit toujours le même ordre : document, échantillon, méthode, résultats, limites, contaminants et conclusion.
Cette méthode permet de repérer rapidement les certificats exploitables, les informations manquantes et les conclusions qui nécessitent une vérification supplémentaire.
Un certificat réellement utile doit permettre de relier un laboratoire identifiable, un rapport complet, un échantillon précis, un numéro de lot, des méthodes, des résultats chiffrés et des limites clairement définies .
Les huit vérifications à effectuer dans l’ordre
Identifier le laboratoire
Relevez son nom, son établissement, ses coordonnées et l’éventuelle référence de son accréditation.
Vérifiez que le document provient bien d’une source identifiable.
Contrôler le rapport
Repérez son numéro unique, ses dates, sa version, sa pagination et son mécanisme de validation.
Assurez-vous que toutes les pages et les notes sont disponibles.
Vérifier l’échantillon et le lot
Comparez le nom, la référence, la matrice et le numéro de lot avec le produit présenté.
Distinguez la matière première du produit fini.
Examiner les méthodes
Identifiez la technique, la référence de méthode et son adéquation avec la matrice analysée.
Vérifiez séparément le statut d’accréditation de chaque essai important.
Lire les valeurs et les unités
Ne séparez jamais un chiffre de son unité et de sa base d’expression.
Convertissez les valeurs uniquement lorsqu’elles reposent sur des bases compatibles.
Comprendre les limites analytiques
Recherchez la LOD, la LOQ, les mentions ND ou NQ et l’incertitude de mesure.
Une mention « non détecté » ne signifie pas automatiquement zéro.
Examiner les contaminants
Vérifiez séparément les pesticides, les métaux, la microbiologie, les mycotoxines et les solvants résiduels.
Une famille absente du rapport n’a pas nécessairement été contrôlée.
Vérifier la conclusion
Identifiez le seuil, son origine, la règle d’arrondi et la règle de décision.
La mention Pass doit pouvoir être retrouvée dans les résultats chiffrés.
| Zone du rapport | Élément prioritaire | Vérification | Signal d’alerte |
|---|---|---|---|
| En-tête | Laboratoire et référence | Émetteur, numéro, date et version | Document impossible à identifier |
| Échantillon | Nom, matrice et lot | Correspondance avec le produit | Lot absent ou différent |
| Méthode | Technique et référence | Adéquation avec la matrice | Instrument cité sans méthode |
| Accréditation | Portée de l’essai | Matrice, paramètre, méthode et site | Logo utilisé comme garantie générale |
| Résultats | Valeur et unité | Base brute, sèche, masse ou volume | Chiffre sans unité |
| Profil cannabinoïde | Formes individuelles et totales | CBD, CBDA, THC, THCA et formule | Total impossible à recalculer |
| Limites analytiques | LOD, LOQ, ND et NQ | Sensibilité adaptée au seuil | ND présenté comme zéro absolu |
| Contaminants | Panels réellement réalisés | Substances, limites et résultats | Mention générale « sans contaminants » |
| Conformité | Seuil et règle de décision | Origine du critère et incertitude | Pass sans résultat ni seuil |
Trois niveaux pour classer rapidement un certificat
Il ne s’agit pas d’une note scientifique du produit, mais d’une évaluation de la qualité et de la transparence du document disponible.
Document exploitable
Le laboratoire, le rapport, l’échantillon et le lot sont clairement identifiés.
Les méthodes, unités, limites, résultats et critères sont accessibles.
Document partiellement exploitable
Les principales valeurs sont présentes, mais certaines limites, méthodes ou informations de traçabilité manquent.
Des vérifications complémentaires restent nécessaires.
Document insuffisant
Le lot est absent, les pages sont incomplètes, les unités manquent ou le laboratoire ne peut pas être identifié.
Les conclusions commerciales ne peuvent pas être vérifiées sérieusement.
Aucun élément isolé ne suffit à valider tout le rapport
Un logo d’accréditation ne remplace pas la vérification de la portée.
Un QR code ne remplace pas la correspondance entre le lot et l’échantillon.
Une mention Pass ne remplace pas le résultat, le seuil et la règle de décision.
Les trente points à contrôler
- Le nom complet du laboratoire est visible.
- Le site ou l’établissement concerné est identifiable.
- Le rapport possède un numéro unique.
- La version du document est indiquée.
- Les dates de réception, d’analyse et d’émission sont cohérentes.
- Toutes les pages du rapport sont disponibles.
- La validation ou l’autorisation du rapport est identifiable.
- Le nom de l’échantillon est suffisamment précis.
- Le numéro de lot correspond au produit présenté.
- La matrice analysée est clairement décrite.
- Le rapport distingue matière première et produit fini.
- La personne ayant réalisé le prélèvement peut être identifiée.
- La représentativité de l’échantillon peut être évaluée.
- La référence de chaque méthode importante est disponible.
- La méthode est adaptée à la matrice.
- Le statut d’accréditation est vérifié essai par essai.
- Chaque valeur possède une unité.
- La base brute, sèche, massique ou volumique est connue.
- La quantité totale peut être recalculée si nécessaire.
- Le CBD et le CBDA sont distingués.
- Le delta-9-THC et le THCA sont distingués.
- Les valeurs totales peuvent être recalculées.
- Les LOD et LOQ sont disponibles.
- Les mentions ND et NQ sont définies.
- L’incertitude est lisible pour les résultats décisifs.
- Les différents panels de contaminants sont identifiés.
- La liste des substances réellement recherchées est accessible.
- Le seuil appliqué est visible et utilise la bonne unité.
- L’origine du seuil est identifiable.
- La règle de décision permet de comprendre la mention Pass ou Fail.
Les douze conclusions qu’un certificat ne permet pas automatiquement
« Le PDF existe, donc le produit est contrôlé »
Le rapport peut être incomplet, ancien ou associé à un autre lot.
« Le laboratoire est accrédité, donc tout l’est »
La portée doit correspondre à l’essai précis.
« ND signifie absence totale »
La substance peut être présente sous la limite de détection.
« Le profil cannabinoïde couvre les contaminants »
Ces contrôles nécessitent des méthodes et des panels distincts.
« Un pourcentage donne la quantité totale »
La masse ou le volume du produit reste nécessaire.
« CBD et CBD total sont identiques »
Le CBD total peut inclure la contribution corrigée du CBDA.
« Une analyse fournisseur décrit le produit fini »
Une dilution, un mélange ou un conditionnement peuvent intervenir ensuite.
« Plus le panel est long, meilleur il est »
La pertinence dépend aussi des limites et des performances.
« Pass signifie conforme à toutes les règles »
La conclusion dépend du référentiel choisi.
« Le chiffre central est parfaitement exact »
Toute mesure reste associée à une incertitude.
« Une réanalyse favorable annule la première »
Une justification technique et une procédure sont nécessaires.
« Une analyse résume toute la qualité »
Stockage, traçabilité, homogénéité et maîtrise de la fabrication restent essentiels.
FAQ — Lire un certificat d’analyse CBD
Les réponses essentielles aux questions qui reviennent le plus souvent devant un rapport de laboratoire.
Comment vérifier qu’un certificat est authentique ?
Vérifiez le laboratoire, le numéro du rapport, les dates, la pagination et la version.
Lorsqu’un système officiel de vérification existe, comparez directement ces informations avec celles publiées par le laboratoire.
Que signifie ND dans une analyse ?
ND signifie généralement « non détecté ».
La substance n’a pas été détectée au-dessus de la limite de détection de la méthode.
Quelle différence entre LOD et LOQ ?
La LOD correspond au niveau à partir duquel un signal peut être détecté.
La LOQ correspond au niveau à partir duquel une valeur peut être quantifiée avec les performances prévues.
Un laboratoire accrédité garantit-il toutes ses analyses ?
Non. L’accréditation couvre des activités définies dans une portée.
Il faut vérifier le site, la matrice, le paramètre et la méthode concernés.
Un certificat peut-il couvrir plusieurs lots ?
Un rapport décrit d’abord l’échantillon et le lot identifiés.
Son utilisation pour d’autres lots nécessite une relation de traçabilité et une justification clairement documentées.
Quelle différence entre CBD et CBD total ?
Le CBD correspond à la forme neutre directement mesurée.
Le CBD total peut ajouter la contribution corrigée du CBDA, selon la formule utilisée.
Une analyse cannabinoïde vérifie-t-elle les pesticides ?
Non. Les pesticides nécessitent un panel et une méthode spécifiques.
Leur absence du rapport signifie généralement que cette famille n’est pas documentée.
Pourquoi deux laboratoires obtiennent-ils des résultats différents ?
Les différences peuvent provenir du prélèvement, de l’homogénéité, de la préparation, de la méthode ou de l’incertitude.
Il faut vérifier que les deux résultats concernent bien la même matière et la même base d’expression.
Que faire lorsqu’un résultat est proche d’une limite ?
Examinez l’incertitude, le nombre de décimales, la règle d’arrondi et la règle de décision.
Le résultat central seul peut être insuffisant pour conclure.
Un rapport complet garantit-il toute la qualité du produit ?
Non. Il documente les essais réalisés sur l’échantillon analysé.
La traçabilité, le prélèvement, la fabrication, le conditionnement et le stockage restent également importants.
Les sept principes d’une lecture rigoureuse
Relier le document au produit
Sans correspondance de lot, le certificat perd une grande partie de sa valeur pratique.
Conserver les unités
Un chiffre sans unité ne peut pas être comparé ou correctement converti.
Lire les limites
ND, NQ, LOD et LOQ définissent la portée réelle des résultats faibles.
Vérifier la méthode
La technique doit être adaptée au paramètre et à la matrice.
Délimiter les panels
L’absence d’une substance ne peut être affirmée que si elle a été recherchée.
Considérer l’incertitude
Elle devient particulièrement importante près d’un seuil.
Vérifier les conclusions
Pass ou conforme doit rester relié à un résultat, un seuil et une règle de décision.
Un certificat doit pouvoir être compris, vérifié et replacé dans son contexte
La présence d’un rapport constitue un premier élément de transparence, mais sa valeur dépend des informations qu’il permet réellement de vérifier.
Un document complet doit relier les résultats au bon échantillon, au bon lot, aux bonnes méthodes et aux bonnes unités.
Il doit également permettre de distinguer les valeurs mesurées des calculs, les substances recherchées de celles qui ne l’ont pas été, et les résultats analytiques des conclusions de conformité.
La lecture rigoureuse d’un certificat ne consiste donc pas à rechercher uniquement un taux élevé, un logo ou un voyant vert. Elle consiste à comprendre la portée exacte de chaque information présentée.
La transparence ne consiste pas seulement à publier un certificat : elle consiste à permettre au lecteur de vérifier ce qu’il démontre réellement.
Nous défendons une lecture exigeante des analyses de laboratoire, fondée sur la traçabilité et non sur une simple apparence de conformité.
Les résultats favorables doivent être présentés avec la même précision que les limites, les réserves et les essais non réalisés.
Cette exigence contribue à des choix plus informés et à une relation plus responsable entre laboratoires, entreprises et public.
Ce guide aide à comprendre la structure et le vocabulaire des rapports de laboratoire.
Il ne remplace pas l’interprétation du laboratoire, d’un spécialiste qualifié ou de l’autorité compétente.
Les critères applicables doivent toujours être vérifiés en fonction de la catégorie du produit, de son usage, de sa matrice et du territoire concerné.
Documents utilisés pour construire ce guide
- ISO — ISO/IEC 17025, laboratoires d’essais et d’étalonnages
- ISO — ISO/IEC 17025:2017, exigences générales
- Cofrac — Normes et référentiels d’accréditation
- Eurachem — The Fitness for Purpose of Analytical Methods
- Eurachem — Guides sur l’incertitude de mesure
- Eurachem/CITAC — Use of Uncertainty Information in Compliance Assessment
- ILAC — Guides sur les règles de décision et les déclarations de conformité
- BIPM — Publications du JCGM sur l’incertitude de mesure
Alien Moonrock CBD
Alien Moonrock+ | Enrichi
Amnesia | Fleur CBD
Black Mango Pepper | Fleur CBD | Sélection
Blue Cheese – CBG
Cigare CBD enrichi – King Palm – 5g
Cigarillo CBD enrichi | Glass Tip (1,5 g)
CLÉMENTINE – CBG
Cream 60 – CBD | Enrichi
